Материал: 2_MIKROBIOLOGIYa_temy_5-9_FIZIOLOGIYa_I_IZMENChIVOST_MIKROORGANIZMOV

Внимание! Если размещение файла нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам

Группа

Потребность в О2

Возможные

Примеры

микроорганиз

для жизнедеятельности

типы

микроорганизмов

мов

 

энергетическог

 

 

 

о метаболизма

 

 

течение нескольких минут.

 

 

- умеренные

Концентрация О2 не должна превышать 3%,

 

С.tetani,

 

выдерживают воздействие О2 воздуха в течение

 

С.botulinum,

 

20-30 мин.

 

бифидобактерии,

 

 

 

бактериоды,

 

 

 

пептострептококки

3.

Растут и в присутствии О2, и в бескислородных

Аэробное

Большинство м/о:

Факультативн

условиях

дыхание,

энтеробактерии,

ые анаэробы

 

анаэробное

стафилококки, вибрионы

 

 

дыхание,

 

 

 

брожение

 

16

17

2. Изучение методов создания анаэробных условий

Существует несколько методов создания анаэробных условий

физические:

эвакуационно-заместительный (откачивание воздуха с помощью вакуумного насоса из герметически замкнутой емкости, например, анаэростата или анаэробного бокса, с последующей заменой на бескислородную газовую смесь);

посевы специальными методами - «уколом» в столбик агара, который затем заливают вазелиновым маслом; по методам Перетца, Бурри, Вейон-Виньялю и др. (схема 2);

химические: использование автономных анаэростатов - герметичных сосудов из прозрачного пластика с плотно закрывающейся крышкой в комплекте с газогенирирующими пакетами, которые содержат химические соединения, связывающие молекулярный кислород; используются для создания анаэробных или микроаэрофильных условий;

биологические:

посев по методу Фортнера – совместное выращивание микроорганизмов с разным типом дыхания: на один сектор агара засевают культуру аэробов, на другой – анаэробов, края чашки парафинируют. Аэробы при росте поглощают кислород и создают условия для развития анаэробов;

заражение восприимчивых лабораторных животных (например, культивирование лептоспир в организме морских свинок);

смешанные (использование одновременно нескольких методов).

1

Схема 2

Методы выделения чистых культур анаэробных бактерий

(метод разведений пастеровской пипеткой по Вейнбергу, метод Перетца, Бурри, Вейон-Виньяля)

исследуемая

физиологический

полужидкий сахарный МПА

культура в среде

раствор

 

Китт-Тароцци

 

 

Метод Перетца

одно из разведений Вейнберга помещают между дном и крышкой чашки Петри

 

Метод Бурри

 

Метод Вейон-Виньяля

одно из разведений Вейн-

одно из разведений Вейнберга

берга

набирают

в

набирают в пастеровскую

стеклянную трубку; кон-

пипетку; оттянутый конец пипет-

цы трубки парафинируют

ки запаивают, другой - пара-

 

2

 

финируют

Разведения по методу Вейнберга производят с помощью пастеровской пипетки с запаянным концом, которой последовательно переносят культуру анаэробов, выросших в среде Китт-Тароцци, в 3 пробирки со стерильными физ.растворами и три пробирки с расплавленными и остуженными до 45-500С полужидкими агарами с 1% глюкозой.

3. Выделение и идентификация чистых культур микроорганизмов

Выполняется 2-ой этап исследования чистых культур факультативно-анаэробных и облигатно-анаэробной культуры в соответствии с Приложениями 1 и 2.

При описании двух типов колоний факультативно-анаэробных бактерий учитывают отсутствие или наличие пигмента, придающего культуре определенный цвет и оптическую плотность.

Пигменты бактерий могут иметь различный состав (табл.14) и растворимость.

 

 

Таблица 14

Классификация пигментов бактерий по химическому составу

 

 

 

 

Название химической

Цвет

Примеры м/о,

 

группы пигментов

 

синтезирующих

 

 

 

пигменты

 

каротиноидные

желтый,

S.flava, S.aureus,

 

 

оранжевый,

M.marinum

 

 

красный

 

 

меланиновые

коричневый,

B.niger

 

 

черный

 

 

пирроловые

ярко-красный

S.marcescens

 

фенозиновые

сине-зеленый и

P.aeruginosa

 

 

др.

 

 

По растворимости пигменты подразделяются на: - жирорастворимые (каротиноидные)

3