Материал: Шкарин В.В., Шафеев М.Ш. Дезинфектология.Руководство для студентов медицинских вузов и врачей

Т а б л и ц а 17 Спектр эффективности различных групп микробиологически активных веществ

П римечания: ( + + ) — очень эффективно; ( + ) — эффективно; ( + — ) — эффек­ тивно в определенных случаях; (—) — неэффективно.

Дезинфицирующая жидкость для нейтрализации бактерий должна со­ прикасаться с микроорганизмами. Эффекта не будет, если просто вылить дезинфицирующий раствор на грязные изделия. Наилучший результат дает двухэтапный процесс — вначале очистка, а затем применение дезинфици­ рующих растворов. Очистка удаляет большинство бактерий, а оставшиеся будут доступны дезинфектантам.

Двухэтапный процесс рекомендуется в случаях, когда необходимо про­ дезинфицировать поверхность или оборудование и не стоит вопрос инфек­ ционного риска для персонала. Если сотрудники должны промывать лабо­ раторную стеклянную посуду или использованные инструменты, потенци­ ально загрязненные патогенными возбудителями, необходимо придержи­ ваться определенных правил:

1.Использованные предметы сначала помещают в дезинфицирующий раствор.

2.Добавление моющих средств к дезинфицирующим способствует про­ никновению дезинфектанта внутрь органического материала.

3.Полые инструменты следует погружать в дезинфицирующий раствор вертикально, чтобы вытеснить пузырьки воздуха и обеспечить контакт ра­ створа со всей поверхностью обрабатываемых изделий.

4.Дезинфектанты активнее действуют при более высоких температу­ рах растворов (при мытье практически всегда применяют горячую воду).

5.Использование необходимой концентрации очень важно. Если кон­ центрация ниже рекомендуемой, то результат может быть нулевым. Реко­ мендуемая концентрация дезинфектанта обычно выражается в процентных отношениях.

6.Для успешного дезинфицирующего воздействия на микроорганиз­ мы необходима определенная экспозиция, поскольку мгновенно дезинфи-

<^ 52

пирующего эффекта ни один современный препарат не дает. Необходимое время зависит от группы дезинфектанта, природы присутствующих бакте­ рий, количества и вида материала (наличие органического загрязнения), температуры, концентраций и объема дезсредств. При более низких темпе­ ратурах и концентрациях, при затрудненном доступе к бактериям для дос­ тижения эффективности требуется больше времени. При одинаковых ус­ ловиях грамотрицательные бактерии погибают медленнее, чем грамположительные. Медленнее нейтрализуются кислотоустойчивые бактерии. Спо­ роцидные дезинфектанты убивают споры гораздо медленнее, чем вегета­ тивные бактерии. Активность большинства дезинфектантов прекращается после их высыхания.

Наиболее быстродействующие дезинфектанты — это хлор и спирт. Их эффективность достигается за 2 мин на чистой поверхности. Карболовые дезинфектанты действуют медленнее. В присутствии органического мате­ риала для эффективного действия необходим 30-минутный контакт с дезсредством, а при чистой поверхности — достаточно 8 мин.

7. Нельзя использовать два дезинфицирующих средства одновременно или один сразу же после другого. Единственное исключение из этого пра­ вила — спирт, который эффективно можно использовать с другими дезинфектантами. Известно, что один дезинфектант может инактивировать дру­ гой. Мыло и щелочные моющие средства инактивируют дигуаниды и ЧАС. Кислотные моющие средства инактивируют щелочные дезинфектанты (фе­ нолы) и соединения хлора.

Выделения больных (кровь, гной, рвотные, мокрота, фекалии) содер­ жат органические вещества, что также снижают активность дезинфектан­ тов. Это следует учитывать при проведении дезинфекции в ЛПУ.

Недоброкачественная дезинфекция в большинстве случаев является следствием пренебрежения рекомендуемыми правилами.

КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ДЕЗИНФЕКЦИИ

Контроль проводят визуальным, бактериологическим и химическим ме­ тодами. Бактериологический контроль качества дезинфекции в очагах ки­ шечных инфекций проводят с целью выявления кишечной палочки, в очагах капельных инфекций — стафилококка, в очагах туберкулеза — стафилокок­ ка и кишечной палочки, в ЛПУ — условно-патогенных бактерий. В родо­ вспомогательных и хирургических отделениях, кроме того, определяют об­ щее число бактерий в воздухе и количество золотистого стафилококка в 1 м3. При бактериологическом контроле дезинфекции по эпидемиологическим по­ казаниям берут смывы на присутствие также и патогенных возбудителей.

Санитарно-бактериологические лаборатории ЦГСЭН контролируют эффективность дезинфекции один раз в квартал, лаборатории ЛПУ — один раз в месяц.

<-=а»> 53

Пробы отбирают не позже 30—45 мин по окончании дезинфекции. В квартирных очагах берут не менее 10 контрольных смывов, в ЛПУ и детс­ ких учреждениях — не менее 30. Площадь смыва должна составлять 100— 200 см2. У мелких предметов смывы берут со всей поверхности. При отборе проб отмечают дату их взятия, когда и кем приготовлен дезраствор, какая концентрация указана на этикетке, каковы условия хранения препарата.

Смывы берут стерильным ватным тампоном, вмонтированным в бак­ териологическую пробирку. В пробирке должен содержаться увлажнитель тампона (физиологический раствор или водопроводная вода) либо нейтра­ лизатор дезинфектанта ( 1 % раствор гипосульфита для хлорсодержащих препаратов). Смывы засевают на среды с соблюдением правил асептики в условиях, исключающих возможность вторичной контаминации.

Дезинфекционные мероприятия в ЛПУ считаются эффективными, если во всех смывах с объектов больничной среды не выявлены золотистый ста­ филококк и грамотрицательные условно-патогенные бактерии.

Контроль за качеством дезрастворов осуществляется с помощью хи­ мических методов (лабораторный способ и экспресс-пробы). Целью тако­ го контроля является определение содержания АД В в исходном препара­ те и дезрастворе, а также соответствие концентрации рабочих растворов заданным режимам дезинфекции (согласно инструкциям).Так, для быст­ рого определения качества дезинфекции применяется экспресс-метод оп­ ределения хлорсодержащих дезинфектантов («Хлор-тест») с помощью метоловой индикаторной бумаги. Суть метода заключается в следующем: при взаимодействии активного хлора, содержащегося в определяемом ра­ створе, с метолом индикаторная полоска быстро меняет цвет на сиреневозеленую гамму оттенков в зависимости от концентрации активного хлора. Цвет полоски сравнивают со шкалой цветности, где каждой концентрации раствора соответствует определенный цвет бумаги. Шкала состоит из трех частей:

1)определение концентрации раствора хлорамина;

2)определение концентрации раствора хлорамина, которым обработа­ ны поверхности;

3)определение концентрации растворов хлорной извести и гипохлорита кальция.

Экспресс-метод используют для определения качества наиболее часто используемых растворов следующих концентраций: 0,5; 1,0; 3,0; 5,0; 10%.

Более детально контроль качества дезинфекции изложен в главе П.

Требования к организации и качеству заключительной дезинфекции в эпидочагах

Заключительная дезинфекция проводится в очагах таких инфекцион­ ных заболеваний (или при подозрении на заболевание), как чума, холера, возвратный тиф, сыпной тиф, болезнь Брилля, лихорадка Ку (легочная

<<г>> 54

форма), сибирская язва, высококонтагиозные вирусные геморрагические лихорадки, брюшной тиф, паратифы, сальмонеллезы, туберкулез, проказа, орнитоз, дифтерия, грибковые заболевания волос, кожи и ногтей (микро­ спория, трихофития, руброфития, фавус), чесотка. Как правило, ее осуще­ ствляет персонал дезинфекционных учреждений.

Заключительная дезинфекция проводится на всех объектах, где были обнаружены или выделены возбудители инфекционных заболеваний, не­ зависимо от наличия заболевших. Объектом считается каждое отдельное строение или его часть, имеющие единое целевое назначение и хозяйствен­ ную принадлежность.

Камерная дезинфекция используется при следующих инфекционных заболеваниях: чума, холера, возвратный тиф, сыпной тиф, болезнь Брилля, лихорадка Ку (легочная форма), сибирская язва, высококонтагиозные ви­ русные геморрагические лихорадки, брюшной тиф, паратифы, туберкулез, дифтерия, проказа, микроспория, трихофития, руброфития, фавус, чесот­ ка, платяной педикулез.

Качество заключительной дезинфекции оценивается по следующим показателям:

•Процент охвата заключительной дезинфекцией эпидочагов от числа подлежащих составляет не менее 95%.

•Выполнение заключительной дезинфекции в очагах в течение суток

смомента госпитализации или изоляции больного из организованного кол­ лектива (своевременность) составляет не менее 90%.

•Процент проведенных камерных дезинфекций от числа надлежащих составляет не менее 95%.

•Контроль качества заключительной дезинфекции (визуальный, бак­ териологический— одновременно), проведенный в период от 1 до 3 ч, не менее чем в 1% квартирных очагов и не менее чем в 10% очагов в организо­ ванных коллективах.

•Отбор в очаге не менее 10 смывов, 2 проб дезрастворов, 10 экспресспроб на остаточное количество дезвеществ.

•Бактериологический контроль за дезкамерами проводится не реже 1 раза в квартал.

Требования по организации и качеству текущей дезинфекции на дому

Текущая дезинфекция в очаге инфекционного заболевания на дому организуется медработником, впервые выявившим больного, и проводит­ ся населением до госпитализации больного; при лечении на дому — до выз­ доровления; у бактерионосителей — до полной санации и у переболевших

— до снятия с диспансерного учета. Текущая дезинфекция считается своев­ ременно организованной, если население начинает выполнять ее не позднее чем через 3 ч с момента выявления больного. В очагах применяют физичес-

55