Материал: Уход за больным ребёнком

в стерильную пробирку и доставляется в лабораторию. Важные условия: За день до исследования в лаборатории заказывается стерильная пробирка. Моча собирается до лечения антибактериальными препаратами.

Моча на 17-кетостероиды. Суточное количество мочи собирается в чистую стеклянную емкость и доставляется в лабораторию. Перед сдачей мочи туалет наружных половых органов не проводится.

Использование диагностических тест-полосок для экспресс-

анализа мочи. Тест-полоски (Self-Stik) из целлюлозы с нанесенными на них твердофазными реакционными зонами предназначены для быстрого получения биохимического анализа мочи. Они рассчитаны на практически мгновенное получение результата по принципу «окунуть и читать» на основании визуальной оценки цветовой индикации. Тест-полоски позволяют проводить исследования мочи по 11 параметрам: белок (5(10)-100 мг/дл), глюкоза (от 100 мг/дл), удельный вес

(1000-1030), рН (5-9), кетоновые тела (5 мг/дл), билирубин (0,5-3,0

мг/дл), уробилиноген (0,1-1,0 мг/дл), нитриты (качественно), скрытая кровь (5-10 эритроцитов на 1 мкл), лейкоцитурия (15 лейкоцитов в п/зр.), аскорбиновая кислота (5 мг/дл).

Анализ рекомендуется проводить следующим образом (рисунок

22).

Рисунок 22 – Экспресс-анализ мочи с использованием диагностических тест-полосок. Объяснение в тексте

1.Используется любая чистая, сухая, ранее не использованная посуда для сбора пробы мочи.

2.Из пенала извлекается тест-полоска Self-Stik. Пенал закрывают немедленно после извлечения полоски.

3.Тест-полоску погружают в свежую, хорошо перемешанную мочу на 1 сек. (не дольше) (рисунок 22а). Излишек мочи на тестполоске может привести к искажению результатов, поэтому проводят концом полоски по краю посуды так, чтобы не задеть реакционные зоны. Излишек мочи стечет (рисунок 22б). Излишек мочи можно удалить, промокнув края полоски фильтровальной бумагой.

106

4. Визуально сравнивают окраску реакционных зон тестполоски с цветовой картой интерпретации результатов, расположенной на пенале (рисунок 22в), желательно при хорошем освещении.

Время учета результата 30-60 сек. является критическим для верной интерпретации результатов. При считывании результатов держите полоску горизонтально, чтобы избежать возможного стекания химических реагентов на соседние реакционные зоны вместе с излишком мочи. Изменения цвета, затронувшие только края реакционных зон или произошедшие спустя более 2 мин., не имеют диагностического значения. Учет результатов производят прямым визуальным сравнением окраски реакционных зон тест-полоски с цветовой картой интерпретации окраски на пенале. Никаких дополнительных расчетов и оборудования не требуется.

Взятие кала. Для копрологического исследования фекалии, полученные при самостоятельной дефекации, помещают в чистую, сухую, не пропускающую влагу посуду и доставляют в лабораторию сразу или спустя 8-12 часов, при условии хранения его в течение этого времени в холодильнике при температуре 3-4°С. Нельзя собирать кал в посуду с узким горлом, в картонные и спичечные коробки.

Нельзя исследовать кал после клизмы, применения ректальных свечей, приема слабительных или красящих веществ, а также препаратов железа, висмута, пилокарпина и некоторых других. Кал не должен содержать посторонние примеси, такие как моча, дезинфицирующие вещества. Копрологическое исследование включает макроскопическое, химическое и микроскопическое изучение материала.

Подготовка больного не требует обязательного соблюдения диеты, но рекомендуется, чтобы больной за 2-3 дня до сдачи материала не принимал препараты с противопаразитарным действием, а также препараты, содержащие висмут, уголь, сульфат бария или слабительные средства. Берется несколько фрагментов из разных участков выделенного материала. Материал собирается из горшка и т.д. в сухую чистую стеклянную посуду с широким горлом, посуда закрывается пробкой. Материал доставляется в лабораторию в течение 1 часа.

Исследование кала на скрытую кровь. При подготовке больного ребенка для исследования кала на «скрытую кровь» из рациона исключают (в течение 2-3 дней) мясо, рыбу, все виды зеленых овощей, яйца, т.к. миоглобин и кровь этих продуктов и пероксидаза зеленых растений дают ложноположительную реакцию на «скрытую кровь». Обследуемым больным нельзя применять препараты железа, меди и другие тяжелые металлы, чистить зубы, чтобы механическое повреждение десен не спровоцировало поступление крови в кишечник. Кал

107

для анализа берут из середины калового цилиндра, из разных участков.

Взятие материала на яйца гельминтов

Оснащение: прозрачная липкая лента; предметное стекло; стеклянная емкость; шпатель (деревянная палочка); стеклограф; перчатки; бланк-направление.

Взятие материала на яйца остриц. Самки остриц, выползая из прямой кишки, откладывают яйца в перианальных складках, поэтому при заборе материала используется метод отпечатка на липкой ленте. Перед проведением обследования ребенка не следует подмывать.

Техника выполнения манипуляции:

Вымыть и просушить руки, надеть перчатки.

Поставить стеклографом номер на предметном стекле, соответствующий номеру в направлении.

Отрезать кусок липкой ленты, соответствующий размеру предметного стекла.

Уложить ребенка, раздвинуть ему ягодицы (выполняет по-

мощник).

Приложить к перианальной области отрезок ленты, плотно прижать ее к коже, проведя шпателем (деревянной палочкой) несколько раз по ленте.

Приклеить липкую ленту к предметному стеклу.

Снять перчатки, обеззаразить их, вымыть и просушить ру-

ки.

Оформить направление.

Взятие материала на яйца аскарид и других гельминтов. Самки аскарид и другие гельминты откладывают яйца, которые выбрасываются в просвет кишечника и выделяются с каловыми массами, поэтому для их выявления производят забор кала. Его собирают из горшка, с пеленки или памперса. Испражнения берут из разных мест и помещают в стеклянную емкость, по возможности, с широким горлом.

Техника выполнения манипуляции:

Вымыть и просушить руки, надеть перчатки.

Поставить стеклографом номер на стеклянной емкости, соответствующий номеру в направлении.

Взять палочкой кал из нескольких мест.

Поместить кал в стеклянную емкость, закрыть ее крышкой.

Снять перчатки, обеззаразить их, вымыть и просушить ру-

ки.

Оформить направление.

108

Бактериологическое исследование кала на патогенную кишечную флору

Проводится для обследования детей с подозрением на острую кишечную инфекцию, для обследования контактных лиц и бактерионосителей (после санации последних), а также для обследования других контингентов.

Для забора материала используется 2 метода: взятие нативного материала и забор материала с помощью ректального тампона.

Взятие нативного материала. Материал необходимо забирать из свежевыделенных испражнений, выбирая слизисто-гнойные комочки, содержащие наибольшее количество возбудителей. Забранный материал не должен содержать кровь, так как в ней имеются бактериостатические вещества, задерживающие рост микроорганизмов. Кал для исследования собирают из горшка, у детей младшего возраста - с пеленки или памперса. При заборе материала из горшка в нем не должно содержаться остатков дезинфицирующих средств.

Техника выполнения манипуляции:

Вымыть и просушить руки, надеть перчатки.

Поставить стеклографом номер на пробирке, соответствующий номеру в направлении.

Извлечь из пробирки стерильный тампон.

Взять тампоном небольшое количество испражнений.

Поместить тампон в пробирку.

Снять перчатки, обеззаразить их, вымыть и просушить ру-

ки.

Оформить направление.

Взятие материала с помощью ректального тампона:

Уложить ребенка на спину, детей старше 6 мес. - на левый бок с приведенными к животу ногами.

Извлечь из пробирки стерильный тампон, для облегчения введения увлажнить его (для увлажнения использовать глицерин с физиологическим раствором или другие средства).

Левой рукой раздвинуть ягодицы, правой рукой осторожно вращательно-поступательными движениями ввести тампон в прямую кишку на глубину 3-4 см.

Осторожно извлечь тампон.

Поместить тампон в пробирку.

Снять перчатки, обеззаразить их, вымыть и просушить ру-

ки.

Оформить направление.

109

Контрольные вопросы:

1.Особенности сбора биологического материала у детей различного возраста.

2.Сбор, условия хранения материала для исследования при патологии органов дыхания (мазок из носа, зева, сбор мокроты).

3.Организация сбора и хранения мочи для различных видов лабораторного исследования.

4.Сбор, хранение материала для исследования при заболеваниях органов пищеварения (рвотные массы, испражнения).

5.Соблюдение правил транспортировки.

6.Оформление сопроводительных документов для исследования биологического материала.

Темы УИРС:

1.Определение рН кала.

2.Исследование на патогенные грибы, правила забора материала и доставка их в лабораторию.

Литература Основная:

1. Мазурин, А.В. Общий уход за детьми / А.В. Мазурин, А.М. Запруднов, К.И. Григорьев. – Москва: Медицина, 1989. – С. 153-156.

Дополнительная:

1.Мазурин, А.В. Общий уход за детьми / А.В. Мазурин, А.М. Запруднов, К.И. Григорьев. – Москва: Медицина, 1998. – С. 235-242.

2.Практические навыки педиатра: практическое пособие / М.В. Чичко [и др.]; под ред. М.В. Чичко. – Минск: Книжный дом –

2005. – С. 321-327.

3.О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в РБ: Приказ Министерства здравоохранения Респ. Беларусь, 22

апреля 1993г., № 66.

4.О пересмотре ведомственных нормативных актов, регламентирующих вопросы по проблемам ВИЧ-СПИД: Приказ Министерства здравоохранения Респ. Беларусь, 16 декабря 1998г., № 351.

Занятие №6. Особенности ухода за больными с заболеваниями органов дыхания

Заболевания органов дыхания занимают первое место среди всех болезней, встречающихся в детском возрасте. Чаще всего дети болеют острыми респираторными вирусными инфекциями, пневмониями, бронхитами, несколько реже аллергическими заболеваниями (бронхиальная астма и пр.).

При поступлении в стационар детей с заболеваниями органов дыхания помещают в светлые, просторные и хорошо проветриваемые

110