Материал: Шмид Р. Наглядная биотехнология и генетическая инженерия

Внимание! Если размещение файла нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам

инженерии

РНК

ВВЕДЕНИЕ. В настоящее время считается почти дока-

 

 

занным, что геном на основе ДНК, генетическая ос-

генетической

нова современной биосферы, был производным про-

стейшей жизненной формы, у которой репликация

 

 

происходила при помощи РНК. И сегодня РНК играет

 

важную роль в жизнедеятельности клетки, находясь

 

в форме рибосомной, транспортной и информацион-

 

ной РНК. В биотехнологии РНК применяют для сле-

 

дующих целей: 1) для создания аптамеров (лигандов

Методы

с высоким сродством), 2) для биосинтеза токсичных

белков в условиях in vitro, 3) как вектор в генной те-

 

 

рапии и 4) как интерферирующая РНК при нокауте

 

генов.

 

АПТАМЕРЫ – это искусственно полученные фраг-

 

менты ДНК или РНК, которые обладают высоким

 

сродством к гидрофильным молекулам (белкам, ле-

 

карственным препаратам). Методом SELEX (система-

 

тическая эволюция лигандов при экспоненциальном

 

обогащении) проводят оценку способности к связыва-

 

нию целевых молекул среди обширной библиотеки

 

синтетических молекул ДНК или РНК (до 1014–1015

 

различных последовательностей). Наилучшие канди-

 

даты подлежат амплификации методом ПЦР–РВ и

 

транскрипции in vitro для получения дочерней библио-

 

теки с улучшенными свойствами. Аптамеры позво-

 

ляют добиться стабильного связывания даже в нано-

 

молярном диапазоне концентраций. Разработка

 

аптамеров для диагностических и терапевтических

 

целей преследует значительный коммерческий инте-

 

рес: аптамер-зондирование для протеомного анализа

 

(SomaLogic).

 

ВНЕКЛЕТОЧНЫЙ СИНТЕЗ БЕЛКА. На матрице ДНК

 

синтез белков возможен и в неклеточных условиях.

 

Для этого требуется лизат E. coli, в котором содер-

 

жатся РНК-полимераза, различные тРНК, рибосомы

 

и аминокислоты. В присутствии АТФ удается полу-

 

чить до 1 мг белка за 24 часа. Этот метод коммерче-

 

ски доступен (ProteoMasterTM) и особенно подходит

 

для таких белков, гиперпродукция которых вредна

 

для клетки-хозяина (токсины, протеазы).

 

ГЕННАЯ ТЕРАПИЯ. Использование вирусных РНК-век-

 

торов в генной терапии описано в другом разделе.

 

Фракция мРНК из клеток опухоли человека успешно

 

используется для трансформации моноцитов пациен-

 

та. Их получают из зрелых дендритных клеток in vitro

 

уже содержащими специфичные для опухоли мРНК и

 

используют для стимулирования специфичных к опу-

 

холи цитотоксичных Т-лимфоцитов.

 

ИНТЕРФЕРИРУЮЩАЯ РНК (RNAI). Посттранскрип-

 

ционный сайленсинг генов стал известен в послед-

 

ние годы как важный механизм регуляции экспрес-

 

сии и формирования устойчивости к вредоносным

250

эндо- и экзогенным РНК (например, к РНК-вирусам).

Именно поэтому РНК-интерференцию называют «им-

мунной системой генома». В некоторых случаях РНК имеет вид рибозима (и следовательно обладает каталитической активностью) и способна к гидролизу фосфодиэфирных связей даже в отсутствие нуклеаз. В медицине разрабатывают рибозимы для клинической терапии вирусных инфекций (ВИЧ, гепатит B) и рака. Вероятно, во всех эукариотических клетках мРНК может быть разрушена посредством РНК-ин- терференции. В ходе этого процесса короткую двухцепочечную РНК (dsRNA) активирует РНКаза (DICER, т. е. «игрок в кости»), которая расщепляет dsRNA на небольшие фрагменты длиной 21–23 п.н. («руководящая» РНК). Затем в ходе так называемого эффекторного этапа они участвуют в АТФ-зависимой активации РНК-индуцируемого комплекса сайленсинга (RISC), в который входят хеликаза, эндо- и экзонуклеаза, обеспечивающие специфичную активность. У целевых мРНК имеется последовательность, комплементарная «руководящим» РНК в составе RISCкомплекса, поэтому эти мРНК могут связываться с RISC и подвергаться деградации нуклеазами. Предполагается, что находящаяся в интронах ДНК участвует в управлении механизмом, играющим решающую роль при регуляции экспрессии, т. е. определяет, какие гены экспрессируются в том или ином типе клеток. К потенциальным областям применения малых интерферирующих РНК можно отнести и терапию вирусных заболеваний. Путем экспрессии специально синтезированной искусственной двухцепочечной РНК под промотором гена РНК-полимеразы III может быть предотвращена экспрессия специфичных вирусных генов в трансформированных клетках.

SELEX (получение аптамеров)

 

 

 

 

 

Транскрипция с помощью РНК-полимеразы фага T7

 

Негативная селекция:

 

Позитивная селекция

оценка

ПЦР-

предварительный отбор с целью

в колонках

продукт –

успешности

ДНК

исключения тех РНК, которые

с иммобилизованным

связывания

 

неспецифически связываются с матриксом

лигандом

Ампили-

 

 

 

 

 

 

фикация

Произвольная Транскрипция

Произвольная

элюирование

обратная

(ПЦР)

кДНК

гетерогенная

 

гетерогенная

с аффинным

транскрипция

ДНК

 

ДНК

лигандом

 

 

 

 

 

 

 

удаление несвязанной РНК

 

Клонирование

Определение

Синтез последовательности in vitro

Аптамер

последовательности

 

 

 

 

Аптамеры на основе РНК с высоким сродством к внеклеточным белкам (примеры)

Целевой белок

 

Kd (нмоль)

 

Нуклеиновая кислота

Ацетилхолиновый рецептор

 

2,0

 

РНК

 

Основной фактор роста фибробластов (PGDF)

 

0,35

 

РНК

 

γ-Интерферон

 

6,8

 

2’-Модифицированная РНК

Фактор роста кератиноцитов (KGF)

 

0,0003

 

2’-Модифицированная РНК

Аптамерный комплекс

 

Биосинтез белков in vitro

 

Красным

 

 

 

 

 

 

показан

 

 

 

 

 

 

витамин B12

 

ДНК-матрица

Белок

 

(1DDY_5)

 

 

 

 

 

 

 

 

Транс-

Объем реакционной

 

 

 

Транс-

ляция

системы

 

 

 

крипция

 

Молекулы тРНК,

 

 

 

T7-полимераза

 

 

рибосомы

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Мембрана

 

 

 

Нуклеотид-

Метаболиты,

 

 

 

 

трифосфаты,

побочные

 

 

 

 

аминокислоты,

продукты,

 

 

 

 

фосфоенол-

непереносимый

 

 

 

 

пируват

субстрат

Объем реагентов

 

 

 

 

 

 

RNAi – интерферирующая РНК

 

 

 

 

 

 

неспецифичная

 

 

 

 

двухцепочечная

 

 

 

РНК-зависимая

 

 

одноцепочечная РНК

 

РНК вирусного

 

РНК-полимераза

 

или иного

 

 

неспецифически

 

 

происхождения

 

Амплификация

 

 

 

 

расщепляющая

 

 

 

 

Р

РНКаза (“DICER”)

 

 

двух-

 

Р

 

 

 

 

цепочечная

 

 

 

 

 

РНК

 

Интерферирующий

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

РНК-дуплекс

 

 

 

 

 

 

(21–23 нуклеотида)

 

 

 

 

 

Хеликаза

«Руководящая»

 

 

 

 

 

РНК

 

АААА

 

 

 

 

зрелая мРНК

 

 

 

 

 

 

Эндо-

 

 

 

 

 

 

нуклеаза

 

 

 

АААА

Деградация

 

 

 

 

 

 

Экзо-

 

 

 

 

мРНК

Активность

нуклеаза

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

по поиску гомологии

 

 

 

 

251

 

 

 

 

 

 

Методы генетической инженерии

Геномные библиотеки и картирование генома*

ВВЕДЕНИЕ. Даже такие небольшие геномы, как у фагов или вирусов, оказываются слишком велики для прямого секвенирования. Для изучения структуры генома его расщепляют на мелкие фрагменты, определяют нуклеотидную последовательность фрагментов путем секвенирования, а затем с помощью компьютерных методов создают полную ДНКили РНК-кар- ту генома. Генетический код избыточен, поэтому для изучения структуры генома (генетического картирования) необходимо иметь соответствующие маркерные участки (маркеры), как правило, это – ДНК-мар- кирующие сайты STS (sequence-tagged sites).

ГЕНОМНАЯ БИБЛИОТЕКА. Геномная библиотека – это множество клонированных фрагментов ДНК, в совокупности охватывающих весь геном. Для получения библиотеки геном расщепляют на фрагменты, а затем полученные фрагменты встраивают в векторы. Для облегчения процедуры упорядочивания фрагменты должны быть достаточно крупными, поэтому для ферментативного расщепления используют такие рестриктазы, сайты которых встречаются в геноме относительно редко. Примером может служить рестриктаза Not I, узнающая последовательность 5'-GCGGCGC-3. Необходимо учитывать, что частота встречаемости той или иной последовательности в геноме зависит от GC-состава ДНК и от частоты повторяемости участков ДНК.

ВЕКТОРЫ. При создании геномной библиотеки фрагменты ДНК встраивают в векторы, а затем полученные ДНК-конструкции вводят в клетки. В таком виде фрагменты ДНК доступны для выделения, анализа и амплификации. Чем крупнее геном, тем бо’ льшим количеством клонов представлена полная геномная библиотека. Для больших эукариотических геномов наиболее подходящими векторами являются космиды или дрожжевые/бактериальные искусственные хромосомы YAC/BAC (yeast/bacterial artificial chromosomes). В эти векторы можно встраивать фрагменты ДНК размером до 2 млн п.н., однако для прямого секвенирования такие фрагменты слишком велики. Субклонирование осуществляют, используя векторы на основе генома фага λ, например космиды, позволяющие встраивать фрагменты ДНК размером 30–45 т.п.н.

КАРТИРОВАНИЕ ГЕНОМА. Классический метод картирования генома основан на наблюдении за наследованием сцепленных фенотипических признаков. Так, для представителей аскомицетов Neurospora crassa

и дрожжей Saccharomyces cerevisiae можно построить физическую карту генома, анализируя тетрады: у этих организмов споры в аске располагаются в том порядке, в котором они образовались при мейозе,

поэтому изучение распределения фенотипических признаков облегчается. Методы генетической инженерии значительно расширили возможности картирования генома. Результаты секвенирования фрагментов генома, полученных после ферментативного расщепления, позволяют определить полную структуру небольшого генома или выделить уникальные маркерные последовательности больших геномов. С помощью хорошо подобранных праймеров для ПЦР или зондов для гибридизации можно получать специфичные маркеры для больших фрагментов ДНК, например для флуоресцентной гибридизации in situ

(FISH – fluorescence in situ hybridization). «Причесывание» ДНК – способ упорядочивания ДНК для маркировки. Для этого в раствор, содержащий крупные фрагменты ДНК (около 10 т.п.н.), погружают обработанный полилизином носитель. При медленном удалении носителя из раствора (со скоростью примерно 0,3 мм/с) ДНК-фрагменты располагаются на нем параллельно друг другу, что значительно облегчает процесс их маркировки. Для анализа больших эукариотических геномов ранее создавали хромосомоспецифичные библиотеки. Их сохраняют посредством окрашивания флуоресцентными красителями и клеточной сортировки, зависящей от интенсивности флуоресценции (FACS), так как количество красителя, связанного с отдельными хромосомами, меняется.

ДНК-МАРКИРУЮЩИЕ САЙТЫ (STS) – это специфические участки ДНК размером 100–500 п.н., которые встречаются в геноме всего один раз. Изначально предполагается, что STS не содержат повторяющихся последовательностей. STS часто получают из больших фрагментов генома, содержащихся в клонотеке (библиотеки BAC или YAC). Если при секвенировании генома удалось получить коллекцию таких ДНК-мар- керов, то, создав на их основе праймеры для ПЦР, можно определить их взаиморасположение в геноме: размер продукта ПЦР зависит от расстояния между маркерами в геноме. В банке данных можно найти более крупные последовательности ДНК, несущие два соседних ДНК-маркера. ДНК-маркеры представляют собой очень удобный инструмент для анализа сцепленных генов.

252 * Льюин Б. Гены / Пер. с англ. – М.: БИНОМ. Лаборатория знаний, 2010. – 892 с: цв. илл. – (Лучший зарубежный учебник).

Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»

Геномные библиотеки

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Число исследованных клонов (Р = 95%)

 

 

 

Гаплоидный

λ-Вектор

 

Космиды

BAC

 

YAC

 

геном b

(EMBL4)

 

a = 35 т.п.н.

a = 250 т.п.н.

a = 1000 т.п.н.

 

 

a = 17 т.п.н.

 

 

 

 

 

 

E. coli

4 800 000

850

 

 

410

56

 

13

S. cerevisiae

14 000 000

2 500

 

 

1 200

167

 

41

Drosophila melanogaster

170 000 000

30 000

 

 

14 500

2 036

 

508

Томат

700 000 000

123 500

 

 

59 000

8 387

 

2 096

Человек

3 000 000 000

529 000

 

 

257 000

35 948

 

8 986

Лягушка

23 000 000 000

4 053 000

 

1 969 000

275 602

 

68 901

 

N = число исследованных клонов

 

 

a = средняя длина ДНК-фрагментов,

 

Р = вероятность

 

 

 

встроенных в вектор, п.н.

 

 

 

 

 

b = полный размер генома, п.н.

Картирование генома

 

Обработка

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Электрофорез

 

 

Выделение ДНК

ультра-

 

 

 

 

звуком

 

 

в агарозном геле

 

 

Клетки

 

Фрагменты ДНК

1: Фрагментированная ДНК

 

 

 

 

 

 

 

 

2: ДНК-маркер

 

Секвенирование

Создание

 

Выделение из геля

 

концевых участков ДНК

библиотеки

 

фрагментов ДНК

 

 

 

клонов

 

размером

 

 

 

 

 

 

 

1,6–2,0 т.п.н.

Создание контигов

 

 

 

 

Использование

 

 

(наборов клонированных

 

 

 

 

 

 

фрагментов, непрерывно

 

 

 

 

библиотеки клонов

 

 

перекрывающих часть генома)

 

 

 

для картирования

 

 

 

 

 

 

 

генома

 

 

 

Создание STS-карты

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Близко-

 

Удаленные

 

 

 

 

расположенные

друг от друга

 

 

 

 

маркеры

 

маркеры

Полная ДНК

 

 

 

 

 

 

 

Полная последовательность ДНК

 

 

 

 

 

или ее крупный

 

 

 

 

 

 

 

фрагмент

 

 

 

 

 

 

 

Коллекция

 

 

 

 

 

 

 

мелких

 

 

 

 

 

 

 

фрагментов

 

 

6 общих

 

2 общих

 

 

 

 

фрагментов

 

фрагмента

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

253

Методы генетической инженерии

254

Геном прокариот

ВВЕДЕНИЕ. При создании генетических карт прокариот анализируют изменения фенотипических признаков, происходящие в результате процессов конъюгации (перенос ДНК из одной контактирующей клетки в другую), трансдукции (передача ДНК между двумя бактериальными клетками с помощью фага) или трансформации (введение очищенной ДНК в клетку). Первая физическая карта генома (полная нуклеотидная последовательность) была получена в 1995 г. Для построения карты генома используют метод выстраивания клонированных фрагментов в контиги и метод «дробовика» (shotgun).

ГЕНЕТИЧЕСКИЕ КАРТЫ. За изменением многих фенотипических признаков можно наблюдать при размножении бактерий. В качестве маркеров можно использовать способность бактерии образовывать жгутики или споры, а также устойчивость к антибиотику. Для изучения путей биосинтеза используют мутантные штаммы, в которых блокирована одна из стадий биосинтеза. Для роста таких мутантов необходимо наличие в среде веществ, которые бактерия сама больше не может синтезировать. Немаловажным преимуществом бактерий является короткий жизненный цикл (время между образованием клетки и ее делением), часто он занимает менее 1 ч. Сопоставление фенотипических изменений и времени проникновения тех или иных участков ДНК в клетку-реципиент при конъюгации позволяет определить взаиморасположение генов, которые кодируют эти признаки. Таким образом, карты генома прокариот строят в масштабе минут или центисом. Процесс переноса всего генома E. coli в клетку-реципиент при 37 °С занимает 100 мин.

ФИЗИЧЕСКОЕ КАРТИРОВАНИЕ: ПОЛУЧЕНИЕ КОНТИГОВ. Важной задачей является идентификация клонов геномной библиотеки, содержащих перекрывающиеся фрагменты ДНК (контиги) (от англ. contiguous – непрерывный). Исходя из этой информации, можно реконструировать непрерывный ряд клонированных фрагментов, составляющих весь геном. Для поиска контигов применяют метод генетической «дактилоскопии» (clone fingerprinting), например, сравнивая рестриктные карты или перекрывающиеся STS и выявляя «соседние» клоны. Полезную информацию можно получать из анализа распределения генетических маркеров. Позиционное клонирование (т. е. поиск гена, соседствующего с маркером) осуществляют методом «прогулки по хромосоме» (chromosome walking). Уникальный участок ДНК, примыкающий к одному из концов клонированного фрагмента, используют в качестве зонда для гибридизации с геномной библиотекой. Некоторые гибридизующиеся клоны полностью перекрываются с исходным участком, а другие включают новые сег-

менты. Таким образом карта расширяется. При повторении этой процедуры совершается «прогулка» на бо’ льшее расстояние.

ФИЗИЧЕСКОЕ КАРТИРОВАНИЕ ГЕНОМА: МЕТОД «ДРОБОВИКА» (SHOTGUN). Физическая карта генома представляет собой его полную нуклеотидную последовательность. В настоящее время возможно секвенирование фрагментов ДНК размером до 600 п.н. Для создания физической карты геном разрезают на небольшие фрагменты с помощью рестриктаз или ультразвука, затем секвенируют клонированные фрагменты и с помощью компьютерных программ устанавливают последовательность их расположения в геноме. Современные компьютерные технологии позволяют быстро составлять карты и анализировать бактериальные геномы (размером, как правило, до 5 млн п.н.). Наличие генетических карт и постоянное пополнение данных о взаиморасположении генетических маркеров позволяет проводить корреляцию между физической и генетической картами. Так, к 1990 г. на хромосоме E. coli были локализованы более 1400 генетических маркеров, расположенных

всреднем через каждые 3300 п.н. (размер всего генома E. coli составляет 4,64 млн п.н.). БИОИНФОРМАТИКА. Большинство компьютерных программ для анализа генома основываются на поиске гомологичных последовательностей, поэтому даже такое редкое явление, как ошибка секвенирования (стандартная точность секвенирования составляет 99%), приводит к появлению неточностей практически во всех последовательностях. По этой причине

вкомпьютерные банки данных вносят информацию, подтвержденную многократным секвенированием.