|
Продолжение табл. 20 |
|
|
Помещения ЛПУ |
Обследуемые объекты |
|
|
Комната для вторич |
Весы, клеенка детского пеленального столика, детская кро |
ной обработки ново |
вать, аппарат искусственной вентиляции легких, насадка и |
рожденных |
шланг кислородной подводки |
Комната сбора, пас |
Рабочий стол для чистой посуды, внутренняя поверхность хо |
теризации и хране |
лодильника для хранения молока, емкость для сцеживания |
ния грудного молока |
молока, молокоотсосы, марлевая салфетка для укупорки бу |
|
тылочек (на стерильность), воронки, соски, внутренняя по |
|
верхность кастрюли для пастеризации молока, стерильные |
|
бутылочки для грудного молока и питьевых растворов, |
|
грудное молоко |
Послеродовая палата |
Клеенка или пеленка, используемая роженицей при кормлении |
|
новорожденного, комплект чистого постельного и нательного |
|
белья, емкость для сцеживания грудного молока |
Приемное отделение |
Клеенка на кушетку, чистые мочалки, бритвы, рабочий меди |
|
цинский стол, предметы ухода за больными |
|
|
го агара и на среду Эндо. Посевы выдерживают в термостате при темпера туре 37°С. Результаты учитывают через 48 ч. Дезинфекцию считают эффек тивной при отсутствии роста микроорганизмов.
В акушерских стационарах обязательным является бактериологичес кий контроль подвергнутого пастеризации грудного молока, растворов для питья и масла для обработки кожи новорожденных. Колититр пастеризо ванного грудного молока должен быть не ниже 11,1 см3, общее микробное число — не более 500, золотистый стафилококк должен отсутствовать в 1 мл. Растворы для питья новорожденных и масло для обработки кожи дол жны быть стерильными.
Контроль за состоянием аутофлоры кожи, обсемененности нательного и постельного белья больных и спецодежды персонала асептических отде лений проводится 1 раз в месяц лабораторией ЛПУ путем взятия проб ме тодом отпечатков старшей медицинской сестрой отделения. Бактериоло гический контроль эффективности обработки кожи операционного поля и рук медицинского персонала проводится выборочно старшей операцион ной сестрой 1 раз в неделю. В смывах с рук персонала, инвентаря, санитар ной одежды бактерии группы кишечной палочки и золотистый стафило кокк должны отсутствовать.
Бактериологический контроль санитарного состояния аптек осуществ ляется персоналом лаборатории ЛПУ не реже двух раз в квартал. Объекта ми бактериологических исследований являются вода дистиллированная, инъекционные растворы до стерилизации, инъекционные растворы после стерилизации, глазные капли после стерилизации, глазные капли на сте рильных основах, сухие лекарственные вещества для приготовления инъ екционных растворов, аптечная посуда, пробки , прокладки, прочие вспо-
^ 73 ^
могательные материалы: инвентарь, оборудование, руки и специальная одежда персонала, воздушная среда. При исследовании аптечной посуды количество мезофильных аэробов и факультативных анаэробов не должно быть более 150 колоний в 10 см3 смывной жидкости, бактерии группы ки шечной палочки не должны обнаруживаться.
Таким образом, дезинфекции в ЛПУ подлежат те объекты, которые могут иметь эпидемиологическое значение в распространении внутрибольничных инфекций: поверхности в помещениях (пол, стены, дверные ручки, подоконники и др.), поверхности приборов, оборудования, предметы ухода за больными, ИМН, воздух в помещениях, посуда столовая и лаборатор ная, белье нательное и постельное, постельные принадлежности (подушки, матрацы), выделения больных и т.п.
Дезинфекцию проводят с целью уничтожения патогенных и условнопатогенных микроорганизмов.
Для дезинфекции в ЛПУ рекомендуется использовать физический и химический методы. Обработку объектов следует проводить в соответствии с инструктивными документами различными способами: орошением, про тиранием, замачиванием, засыпкой, кипячением, путем обработки в дезин фекционных камерах.
В соответствии с «Основами законодательства Российской Федерации об охране здоровья граждан» от 18.06.93 г. (ст. 43) в практике здравоохра нения используются только те дезинфицирующие средства, которые разре шены к применению в установленном порядке.
Ответственность за проведение и организацию дезинфекционных ме роприятий в ЛПУ несет руководитель учреждения, который должен руко водствоваться действующими инструктивно-методическими документами и приказами.
Предстерилизационная очистка
Второй этап обработки изделий многократного использования — пред стерилизационная очистка, которую проводят для удаления белковых, жи ровых, лекарственных, механических загрязнений после дезинфекции и последующего отмывания инструментов от остатков дезинфектантов. Пред стерилизационная очистка обеспечивает эффективность последующей сте рилизации и безвредность использования простерилизованных изделий, снижает риск пирогенных реакций.
Предстерилизационная очистка осуществляется ручным или механи зированным (с помощью специального оборудования) способом.
Механизированная предстерилизационная очистка должна прово диться струйным, ротационным методами, с применением ершей или уль тразвука, с использованием ПАВ. Методика проведения очистки медицин ских инструментов и аппаратуры должна соответствовать инструкции по эксплуатации, прилагаемой к оборудованию, а используемые для пред-
стерилизационной очистки средства разрешены к применению (приложе ние 6).
Разъемные изделия должны подвергаться предстерилизационной очи стке в разобранном виде.
При ручной очистке процесс включает ряд операций:
1.Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия в разобранном виде с обязательным заполнением всех каналов и полостей на 15—60 мин (в зависимости от применяемого средства).
При любом способе очистки ИМН могут применяться только те мою щие средства, которые отвечают следующим требованиям:
• хороший моющий эффект при минимальном пенообразовании;
• отсутствие пирогенности,
• отсутствие токсичности;
• хорошая смываемость с изделий;
• отсутствие коррозионного действия.
Вкачестве моющих средств в настоящее время применяют Биолот, Биолот-1, «Лотос», «Лотос-автомат», «Прогресс», «Астру», Бланизол, Септодор, «Луч», «Зифу», Векс-Сайд, «Нику-экстра».
Вместо замачивания в моющем растворе можно использовать кипяче ние в 1,5% растворе моющих средств или 2% растворе двууглекислого на трия в течение 15 мин.
2.Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона, тканевой салфетки (шприца — для каналов) в течение 0,5—1 мин. Температура раствора в процессе мойки не поддержи вается. Ершевание резиновых изделий не допускается.
Моющий раствор перекиси водорода с CMC , а также с двууглекис лым натрием можно использовать в течение суток с момента изготовле ния, если цвет раствора не изменился. Неизмененный раствор можно по догревать до 6 раз в течение рабочей смены. Появление розовой окраски свидетельствует о загрязнении раствора кровью, снижающей эффектив ность очистки.
3.Ополаскивание под проточной водой (0,5—10 мин). Ополаскивание осуществляется в емкостях (ванне, раковине) при по
мощи устройств для струйной подачи воды, насадок для игл в течение вре мени, предусмотренного инструкцией к применяемому средству.
4.Ополаскивание дистиллированной водой в течение 0,5 мин.
5.Сушка горячим воздухом при температуре 85°С до полного исчезно вения влаги в воздушном стерилизаторе при открытом вентиляционном отверстии; в шкафу сушильном стерилизационном — при неплотно закры той дверце для колюще-режущих инструментов или на чистом полотенце.
Предстерилизационная очистка ручным способом с применением за мачивания в моющем растворе представлена в приложении 7.
В настоящее время существует ряд средств, позволяющих проводить одновременно, в один этап, дезинфекцию и предстерилизационную очист ку инструментов (Лизетол, Дюльбак макси, Виркон, Пероксимед). Исполь-
75 <^>»
зование средств, сочетающих дезинфицирующие и моющие свойства, по зволяет сделать процесс очистки инструментов менее трудоемким и сокра тить время обработки. Режимы дезинфекции указанными средствами пред ставлены в приложении 8.
Контроль качества предстерилизацонной обработки инструментов про водится путем постановки проб на наличие остатков крови, полноту отмыва изделий от щелочных компонентов синтетических моющих средств (CMC) и для определения жировых загрязнений. Контролю подлежит 1% каждого вида изделий, обработанных за сутки, но не менее 3—5 единиц.
Азопирамовая проба. Азопирам выявляет наличие следов крови, пероксидаз растительного происхождения, хлорсодержащих препаратов, стираль ного порошка с отбеливателем и ржавчины (окислов и солей железа). Азо пирам содержит 10% амидопирин, 0,1—0,15% солянокислый анилин и 95% этиловый спирт, хранится в плотно закрытом флаконе при температуре +4°С в холодильнике 2 мес, в темноте при комнатной температуре (10—23°С) не более одного месяца. Перед постановкой пробы смешивают азопирам и 3% раствор перекиси водорода в равных по объему количествах и работают этим реактивом в течение 1—2 ч. Проба с азопирамом по чувствительности в 10 раз превышает амидопириновую.
Лмидопириновая проба. Рабочий раствор для постановки амидопириновой пробы представляет собой смесь равных количеств 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора пе рекиси водорода. С помощью этой пробы определяют качество отмывки инструментов от остатков крови.
Фенолфталеиновая проба позволяет выявить наличие остаточных ко личеств щелочных компонентов моющего препарата. Для реакции исполь зуют 1% раствор фенолфталеина.
Пробу с суданом-Ш используют для определения жировых загрязне ний на шприцах и других изделиях, связанных с загрязнениями. Рабочий раствор для постановки пробы может храниться 6 мес в холодильнике в плотно закрытом флаконе.
Методика постановки проб и учет результатов. На контролируемое изделие наносят 2—3 капли реактива и протирают его тампоном. Для конт роля труднодоступных мест применяют ватные турунды, смоченные в ре активе. Для проверки шприца в него наливают реактив и несколько раз про двигают поршень, смачивая его стенки, затем вытесняют реактив на марле вую салфетку или вату. Для проверки игл реактив наливают в шприц, не давший положительной пробы, последовательно сменяя иглы, пропускают реактив через них, выдавливания по 3—4 капли на марлевую салфетку. Для контроля качества обработки катетеров и других полых изделий в них пи петкой (чистым шприцем) вводят реактив, и по истечении некоторого вре мени жидкость сливают на марлевую салфетку.
При положительной азопирамовой пробе возникает фиолетовое окра шивание, быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-си реневое или буроватое. Окрашивание, наступившее позже чем через 1 мин,
^ » 76
не учитывается. Буроватое окрашивание появляется при наличии ржавчи ны и хлорсодержащих окислителей, в остальных случаях окрашивание ро зово-сиреневое.
При положительной амидопириновой пробе возникает сине-зеленое окрашивание. Фенолфталеиновая проба при наличии неотмытых компо нентов синтетических моющих средств дает розовое окрашивание. При про верке шприцев на наличие жировых загрязнений внутрь вносят 3—5 мл реактива с суданом-Ш, смачивая им всю внутреннюю поверхность. Через 10 с краску смывают обильной струей воды. Желтые пятна и потеки указы вают на наличие жировых загрязнений.
При положительных пробах вся партия контролируемых изделий под лежит повторной обработке до получения отрицательных результатов.
Самоконтроль в ЛПУ проводится ежедневно. Организует и осуществ ляет контроль старшая медицинская сестра ЦСО. Результаты контроля от ражают в журнале по форме № 366у.
Стерилизация
Стерилизация обеспечивает полное освобождение вещества или пред мета от микроорганизмов. Поскольку наибольшую устойчивость проявля ют споры микроорганизмов, то стерилизующими являются средства, ока зывающие бактерицидное, вирулицидное и спороцидное действие. Все ме роприятия по стерилизации проводятся согласно МУ 287-113 от 30.12.98. Стерилизуют все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, кон тактирующие с кровью или инъекциоными препаратами, а также медицин ские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со сли зистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.
Стерилизация является основой асептики.
Асептика — это система мероприятий, направленных на профилактику инфицирования ран, тканей, органов, полостей тела больного при хирурги ческих вмешательствах, перевязках, эндоскопических и других лечебных и диагностических манипуляциях.
Асептика тесно связана с антисептикой. В 1-й главе мы подробно оста навливались на отличительных признаках стерилизации и антисептики.
Под антисептикой подразумевается применение различных препара тов (в основном химических) для обеззараживания рук медицинского пер сонала, кожи операционного поля и места инъекции лекарственных средств через кожные покровы, а также непосредственно раневых поверх ностей. Основные требования к антисептическим средствам — широкий спектр антибактериальной активности при минимальном побочном дей ствии. Примером современных антисептиков является хлоргексидина биглюконат, Аминадерм, Асептинол С, Асептинол спрей, Декосепт, Кутасепт Ф, Октенидерм, Октениман, Пливасепт, Сагросепт, Стериллиум, Дегмицид.
77