Материал: Основы сестринского дела

ст е р и л и з у е м ы е изделия, что ухудшает условия их хранения, увеличивает опасность

ре к о н т а м и н а ц и и .

Воздушный метод. Стерилизующим агентом является сухой горячий воздух. От­ личительная особенность метода — не происходит увлажнения упаковки и изделий, и связанного с этим уменьшения срока стерильности, а также коррозии металлов.

Недостатки метода:

•медленное и неравномерное прогревание стерилизуемых изделий;

•необходимость использования более высоких температур;

•невозможность использовать для стерилизации изделий из резины, полимеров;

•невозможность использовать все и м е ю щ и е с я упаковочные материалы.

В о з д у ш н ы й м е т о д проводят в воздушных стерилизаторах п р и с л е д у ю щ и х ре ­ жимах:

•2 0 0 ± З в С — 30 мин;

•1 8 0 ± 3 ° С — 40 мин;

•1 6 0 ± 3 ° С — 120 мин.

Эффективность воздушной стерилизации во многом зависит от равномерного проникновения горячего воздуха к стерилизуемым изделиям, что достигается прину­ дительной циркуляцией воздуха со скоростью 1 м/с и соблюдением норм загрузки стерилизатора .

И паровой, и воздушный методы стерилизации экологически чистые.

Газовый метод о с у щ е с т в л я е т с я п р и 18-80°С. Изделия с т е р и л и з у ю т с я в у п а ­ ковках.

При газовой стерилизации используют этилен-оксид и его с м е с и , формальдегид. В газообразном состоянии этилен-оксид не вызывает коррозии металлов, не пор­ тит изделий из кожи, шерсти, бумаги, пластмасс; он является сильным бактерицидным,

спороцидным и вирулицидным средством. Пары обладают высоким проникновением. Недостаток этилен - оксида — его токсичность для персонала и взрывоопасность

при н е с о б л ю д е н и и техники безопасности . Процесс стерилизации имеет продолжи ­ тельный цикл. Этилен-оксид редко используется в ЛПУ.

Формальдегид по своим качествам не уступает, а по некоторым показателям пре­ восходит этилен-оксид. Для стерилизации, как правило, используются пары 40 - про ­ центного спиртового раствора формальдегида. Стерилизующим агентом может быть формальдегид, испаряющийся из параформа или формалина.

Стерилизация растворами — вспомогательный метод, который применяют при невозможности использования других. Стерилизация растворами имеет следующие недостатки, изделия стерилизуются без упаковки, их необходимо промывать после стерилизации, что может привести к реконтаминации.

Преимущества: повсеместная доступность, легкость в исполнении и др . Стерилизуемые растворами изделия с в о б о д н о раскладывают в емкости . При

большой длине изделие укладывают по спирали, каналы и полости заполняют раствором. После окончания стерилизации изделия трижды (при стерилизации перекисью водорода — дважды) погружают на 5 мин в стерильную воду, каждый раз меняя ее, затем стерильным корнцангом их переносят в стерильную емкость, выложенную сте­

рильной простыней .

Поскольку изделия стерилизуют растворами без упаковки, этот метод может быть использован только при децентрализованной системе .

Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных материалов. Стерилизующим агентом являются ионизирующие у (гамма)- и β (бета)- излучения.

Для индивидуальной упаковки, помимо бумажных используют пакеты из полиэти ­ лена. Сохраняется стерильность в такой упаковке годами, но и он ограничен. Срок годности указывается на упаковке.

36

Радиационный — основной метод промышленной стерилизации . Он использует­ ся предприятиями, выпускающими стерильные изделия однократного применения .

К о н т р о л ь к а ч е с т в а с т е р и л и з а ц и и

Контроль позволяет улучшить качество стерилизации в ЛПУ. Он предусматрива­ ет определение эффективности и параметров стерилизации .

Надежность воздушной стерилизациизависит от конструкции стерилизатора, его исправности, схемы и объема загрузки, используемой защитной упаковки, применяе­ мых методов оперативного и периодического контроля, подготовки персонала, обсу ­ живающего стерилизатор.

Проблема надежности о с о б е н н о актуальна при эксплуатации аппаратов уста­ ревших типов, при отсутствии доступных методов контроля стерилизации .

Контроль эффективности стерилизации в воздушном стерилизаторе осуществ ­ ляется бактериологическим методом и химическими термовременными индикаторами.

Бактериологический метод контроля проводят с помощью биотеста — объекта из определенного материала, обсемененного тест - микроорганизмами . В качестве носителей используют небольшой флакон, с о д е р ж а щ и й с п о р ы B.Licheniformis. Конт­ роль проводят в соответствии с утвержденной методикой. Существуют и готовые сертифицированные тесты со с п о р а м и B.Licheniformis с цветными питательными средами, позволяющими провести бактериологический контроль непосредственно в

дикаторами. Для оперативного контроля ранее рекомендовали многочисленные хи ­ мические вещества, точка плавления которых соответствует температуре стерилиза ­ ции. Но на сегодняшний день всем ясно, что они не могут считаться надежными инди ­ каторами, поскольку не дают представления о времени воздействия горячего возду­ ха на изделие. Такой контроль носит ориентировочный характер и не гарантирует достижения стерильности в процессе стерилизации .

Надежность оперативного контроля существенно повышается при использова­ нии индикаторов интегрированного действия, в частности, НП фирмы «Винар» ИС-160 и ИС-180, изменяющая окраску до цвета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки. Полос­ ки индикатора закладываются в контрольные точки стерилизатора при каждом цикле стерилизации. Если окраска индикатора после стерилизации в какой-либо точке свет­ лее эталона, все изделия считаются нестерильными.

Пакеты из пергаментной бумаги, используемые для упаковки, при стерилизации в современной с т е р и л и з у ю щ е й аппаратуре имеют подобный индикатор, нанесенный в фабричных условиях.

— Надежность паровой стерилизации зависит от нескольких факторов:

•соблюдения условий эксплуатации;

•точности контрольно-измерительных приборов, установленных на стерилизаторе;

•полноты удаления воздуха из стерилизуемых изделий;

•герметичности камеры стерилизатора .

Методы периодического контроля паровых стерилизаторов изложены в системе «чистый инструмент». Они включают:

•проверку точности манометра;

•проверку точности регистрации самописцами температуры и давления;

•контроль герметичности камеры стерилизатора;

•контроль качества автоматического вакуум-теста;

•контроль эффективности сушки текстильных материалов;

•проверку полноты удаления воздуха из стерилизуемых изделий.

Определение эффективности бактериологическим методом в паровом сте­

рилизаторе осуществляется тестами, с о д е р ж а щ и м и с п о р ы B.Stearothermophilus в соответствии с методикой, утвержденной МЗ РФ.

37

О п е р а т и в н ый контроль паровой стерилизации проводят х и м и ч е с к и м и и н д и к а ­ т о р а м и интегрированного действия (термо-временными).

Индикаторы плавления (тиомочевина, бензойная кислота и др . ), которые все еще используются в некоторых ЛПУ, не являются индикаторами стерильности, поскольку регистрируют только температуру, но не учитывают стерилизационную выдержку (время стерилизации) . И н д и к а т о р ы ф и р м ы «Винар» ИС-120 и ИС-132, также, как и в воз­

При каждом цикле полоски индикатора закладываются в контрольные точки сте­ рилизатора. Если окраска индикатора в какой-нибудь точке светлее эталона, все из­

Бактериологическое и паразитологическое исследования проводятся для диаг­ ностики и осуществления контроля над распространением инфекции.

Емкости для проб получают накануне в бактериологической (паразитологической) лаборатории .

П о д г о т о в к а к в з я т и ю п р о б ы б и о л о г и ч е с к о г о м а т е р и а л а д л я б а к т е р и о л о г и ­ ч е с к о г о и п а р а з и т о л о г и ч е с к о г о и с с л е д о в а н и я

•Материал для исследований нужно брать до начала антибактериальной тера ­ пии или через 8-10 ч после введения последней дозы антибактериального препарата.

•Чтобы избежать загрязнения пробы микрофлорой окружающей среды, необхо­

ди м о соблюдать строжайшую асептику.

•Использовать:

а) ватные тампоны для взятия биологического материала из раны, со слизистых оболочек (глаз, зева, носа);

б) проволочную петлю для взятия биологического материала из влагалища, аналь­ ного отверстия;

в) стерильную посуду для непосредственного с б о р а мочи, мокроты, кала.

•Количество материала должно быть достаточным для исследования и при не­ обходимости — для его повторения.

•Соблюдать требования транспортировки:

а) транспортировку полученного биологического материала в лабораторию про­ изводят в максимально короткие сроки;

б) если материал нельзя немедленно транспортировать в лабораторию, его сле­ дует хранить в холодильнике, или в специальных транспортных средах, когда транс­ портировка длится более 24 ч, а также когда микроорганизмы погибают почти сразу после взятия;

в) биологический материал для культивирования строгих анаэробов транспорти ­ ровать в специальных флаконах, заполненных газом;

г) материал для бактериологического исследования транспортировать в с п е ц и ­ альных жестких емкостях ( бикс и т.п.)

•К клиническому образцу необходимо приложить сопроводительный документ,

со д е р ж а щ и й с л е д у ю щ и е сведения:

38

О б у ч е н и е п а ц и е н т а ( п а ц и е н т к и ) т е х н и к е с б о р а м о ч и д л я б а к т е р и о л о г и ­ ч е с к о г о и с с л е д о в а н и я

Оснащение: стерильная емкость, бумажное полотенце, салфетки.

I. П о д г о т о в к а к п р о ц е д у р е

1. Уточнить у пациента понимание цели предстоящего исследования и получить его согласие (информированное согласие на процедуру получает врач). В случае неинформированности пациента — уточнить у врача дальнейшую тактику.

2. Объяснить пациенту цель предстоящей подготовки к исследованию и ее пос­ ледовательность.

3.А. Подготовка женщины (рис.. 1.10)

Рис. 1.10. Подготовка и взятие мочи для микробиологического исследования у ж е н щ и н

•Утром накануне процедуры приготовить теплую кипяченную воду и мыло для подмывания.

•Зайти в туалетную комнату и раздеться ниже пояса.

•Вымыть руки.

•Расстелить бумажное полотенце, положить на него бумажные салфетки и по­

ставить закрытый с о с у д для с б о р а мочи.

• Сесть как можно ближе к спинке унитаза и развести ноги. Пальцами раздвинуть половые губы и держать их раздвинутыми до окончания процедуры .

39

• Подмыться тщательно кипяченой водой с мылом, проводя рукой в направлении с п е р е д и назад.

•Осушить (по очереди) правую и левую половые губы и наружное отверстие мочеиспускательного канала, используя три салфетки.

•Выбросить салфетки в унитаз.

3.Б. Подготовка мужчины (рис. 1.11).

Рис. 1.11. Подготовка и взятие мочи для микробиологического исследования у мужчин

•Приготовить теплую кипяченую воду и мыло для подмывания.

•Расстелить в туалетной комнате бумажное полотенце, положить на него бумаж­

ные салфетки и поставить закрытый с о с у д для с б о р а мочи.

•Вымыть руки.

•Взять половой член, как при мочеиспускании, освободить головку, отодвинуть крайнюю плоть и вымыть ее водой с мылом.

•Высушить головку полового члена, используя три салфетки; выбрасывать сал ­

фетки в унитаз сразу же после однократного промокания.

I I . В ы п о л н е н и е п р о ц е д у р ы

4. Взять емкость для с б о р а мочи, открыть крышку, не прикасаясь к внутренней поверхности емкости и крышки; положить крышку на бумажное полотенце внутрен­ ней поверхностью вверх.

5. Выпустить немного мочи в унитаз и задержать мочеиспускание.

6. Подставить с о с у д для мочи, не касаясь им гениталий и ануса (головки полового члена).

7. Собрать в с о с у д 3-5 мл мочи и задержать мочеиспускание.

Закрыть емкость с мочой крышкой, не касаясь ее внутренней поверхности, и за­ кончить мочеиспускание в унитаз.

8. Вымыть руки. Одеться.

III . З а в е р ш е н и е п р о ц е д у р ы

9. Отнести в контейнере с о с у д с мочой и направление в лабораторию (в амбула­ торных условиях. В условиях стационара — отдать медсестре) .

40