Материал: Возбудитель Холеры

Внимание! Если размещение файла нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам

16

Рисунок 21 – Рост холерного вибриона на TCBS-агаре.

На среде Монсура (желтого цвета) через 12-18 часов культивирования формируются колонии серого или черного цвета (за счет восстановления теллурита) диаметром 2,0-2,5 см (рисунок 22).

Рисунок 22 – Компьютерное изображение роста холерного вибриона на среде Монсура.

В щелочной хлорида, холерный вибрион образование нежной приподняты вдоль стенок разрушается и оседает на

ЩЩелочнаяе л о ч н а я ппептоннаяе п т о н н а я вводао д а

ККонтрольо н т р о л ь ХХолерныйо л е р н ы й ввибриони б р и о н

ППарагемолитическиа р а г е м о л и т и ч е с к и й ввибриони б р и о н

а б Рисунок 23 - Характер роста холерного вибриона в щелочной пептонной воде: а –

контроль, б – опыт.

17

Пептонная вода с добавлением 0,5-1% натрия хлорида является оптимальной средой накопления при выделении возбудителя холеры из исследуемого материала.

Биохимические свойства

Возбудители холеры обладают сахаролитической и протеолитической активностью. Холерные вибрионы сбраживают с образованием кислоты без газа глюкозу, сахарозу, маннозу, маннит, лактозу (медленно), крахмал. Ферментация глюкозы может протекать как в аэробных, так и в анаэробных условиях. Эта способность выявляется на среде Хью-Лейфсона. Среда содержит питательный агар, глюкозу и индикатор. Посев производится вглубь столбика агара в две пробирки. В одну из пробирок вносят вазелиновое масло для создания анаэробных условий. При росте холерного вибриона цвет среды за счет разложения глюкозы до кислоты изменяется в обеих пробирках.

Холерный вибрион не ферментируют арабинозу, лактозу и инозит. По способности ферментировать маннозу, сахарозу и арабинозу Б. Хейберг распределил все вибрионы (холерные и холероподобные) на несколько групп (таблица 3).

Таблица 3 – Классификация вибрионов по Б. Хейбергу

 

Группа

 

Ферментация

 

 

 

маннозы

сахарозы

арабинозы

I

 

+

+

-

II

 

-

+

-

III

 

+

+

+

IV

 

-

+

+

V

 

+

-

-

VI

 

-

-

-

VII

 

+

-

+

VIII

 

-

-

+

Холерные вибрионы относятся к первой группе Б. Хейберга (ферментируют маннозу и сахарозу и не разлагают арабинозу).

Протеолитическая активность холерного вибриона выявляется при посеве культуры уколом в столбик желатина. Холерные вибрионы обладают плазмокоагулирующим (свёртывают плазму крови) и фибринолитическим (разжижают свёрнутую сыворотку) действием. Они свёртывают молоко, разлагают белки до аммиака и индола, сероводорода не образуют, восстанавливают нитраты в нитриты (положительная нитрозо-индоловая реакция).

Биовар Эль-Тор обладает гемолитической активностью в отношении эритроцитов барана. Лизис эритроцитов барана определяется в пробе Грейга. Гемолизин действует как порообразующий токсин. Однако в настоящее время

18

выделяются штаммы V. cholerae eltor, утратившие гемолитические свойства. Такие штаммы отличаются от классических холерных вибрионов только способностью агглютинировать эритроциты и устойчивостью к полимиксину В. Вибрионы серогруппы О139 также не обладают гемолитической активностью и устойчивы к полимиксину В, но в отличие от V. cholerae eltor имеют капсулу.

Методы изучения свойств холерного вибриона представлены в приложении №2. Биохимические признаки позволяют дифференцировать возбудителей холеры (таблица 4).

Таблица 4 - Дифференциальные признаки возбудителей холеры

Признак

V. cholerae

V. cholerae

V. cholerae

 

биовар

биовар eltor

серовар О139

 

классический

 

(Бенгал)

Реакция Фогеса-Проскауэра

± (чаще -)

± (чаще +)

± (чаще +)

(образование

 

 

 

ацетилметилкарбинола)

 

 

 

Рост на среде с полимиксином

-

+

+

В (50 ед./мл)

 

 

 

Гемолиз эритроцитов барана

-

+

-

Агглютинация куриных

-

± (чаще +)

± (чаще +)

эритроцитов

 

 

 

Образование капсулы

-

-

+

Чувствительность к

+

-

-

классическому бактериофагу

 

 

 

Чувствительность к

-

+

-

бактериофагу Эль-Тор

 

 

 

Реакция Фогеса-Проскауэра основана на том, что при культивировании бактерий семейства Vibrionaceae на среде Кларка накапливается ацетоин (продукт анаэробного превращения глюкозы), который обнаруживается по розовой окраске среды после добавления раствора едкого калия.

Способность к росту на среде с полимиксином (50 ед./мл) определяют путем посева культуры на агар с антибиотиком в чашке Петри с последующим инкубированием посевов при температуре 37ОС в течение 18 часов. Холерные вибрионы классического биовара (V. cholerae биовар cholerae) не растут на полимиксиновом агаре, а для других холерных вибрионов этот признак является положительным (отмечается рост культуры) или вариабельным.

Гемолиз эритроцитов барана (проба Грейга) выявляют путем добавления к бульонной культуре вибрионов взвеси эритроцитов с последующим инкубированием в течение 2 часов в термостате при температуре 37ОС, а затем – в холодильнике в течение суток. Положительный результат проявляется частичным или полным лизисом эритроцитов (лаковая кровь). В контроле (взвесь эритроцитов в бульоне) гемолиз отсутствует, отмечается осадок эритроцитов на дне пробирки, надосадочная жидкость прозрачная.

Агглютинацию куриных эритроцитов определяют на предметном стекле

19

(слайд-агглютинация), смешивая суспензию агаровой культуры с куриными эритроцитами. При положительной реакции отмечается склеивание эритроцитов. В контролях (взвесь эритроцитов в растворе хлорида натрия и суспензия исследуемой культуры в растворе хлорида натрия) агглютинация отсутствует.

Чувствительность к бактериофагам выявляют следующим образом. На поверхность щелочного агара в чашке Петри наносят смесь 0,5-0,7%-ного агара и бульонной культуры возбудителя. После застывания агара с помощью петли или пастеровской пипетки на поверхность наносят капли диагностических бактериофагов. Инкубируют в термостате при температуре 37ОС в течение 18-20 часов. Положительный результат проявляется в виде одного стерильного пятна или группы мелких негативных колоний в месте нанесения капли бактериофага.

Восстановление нитратов и образование индола учитывает нитрозо-

индоловая реакция (холера-рот-реакция). Для постановки этого теста в пептонную воду добавляют 0,1% калия или натрия нитрата и высевают исследуемую культуру. К выросшей культуре добавляют 1-2 капли концентрированной серной кислоты. Положительная реакция проявляется в изменении первоначального желтого цвета среды на ярко-красный, что свидетельствует об образовании нитрозоиндола. Механизм реакции заключается в том, что холерный вибрион восстанавливает нитрат в нитрит, а добавленная серная кислота вытесняет из нитрита азотистую кислоту, которая соединяется с индолом с образованием нитрозоиндола, придающего среде красный цвет.

Протеолитические свойства определяются путем посева культуры уколом в столбик желатина. Положительный результат проявляется разжижением желатина после культивирования при температуре 37ОС.

Антигенная структура

У вибрионов выделяют термостабильные О-антигены и термолабильные Н- антигены. По структуре О-антигена выделяют 206 серологических групп вибрионов (О1 – О206). Возбудителями холеры являются вибрионы, относящиеся к серогруппам О1 и О139. В составе О1-антигена холерных вибрионов выделяют компоненты А, В и С. По сочетанию этих компонентов различают три серотипа V. cholerae - серотип Огава (компоненты А и В), серотип Инаба (компоненты А и С) и серотип Гикосима (компоненты А, В и С). Возбудители классической холеры и холеры Эль-Тор объединяют в О1-серогруппу. Серогруппу О139 представляют V. cholerae bengal.

Н-антиген представляет собой термолабильный белок флагеллин. Этот антиген является общим для всего рода Vibrio.

В стадии диссоциации холерный вибрион имеет OR-антиген. Сыворотка против OR-антигена используется наряду с О-сывороткой и типоспецифическими сыворотками Инаба и Огава для идентификации V. cholerae.

20

Фагочувствительность

Холерный бактериофаг впервые описал в 1918 г. Ф. д'Эрелль. В настоящее время известно несколько холерных бактериофагов. С. Мукерджи разделил холерные бактериофаги на 4 группы. Для фаготипирования V. cholerae он предложил набор бактериофагов. В последующем этот набор был дополнен другими фагами. Используемый в настоящее время набор из семи бактериофагов позволяет выделять среди V. cholerae 16 фаготипов.

Однако для дифференциации холерных вибрионов используют монофаги. Холерный диагностический фаг С избирательно лизирует холерные вибрионы классического типа, фаг Эль-Тор 2 - вибрионы Эль-Тор. Существуют фаги, лизирующие вибрионы обоих типов. Холерные бактериофаги используются в диагностических целях и практически не имеют терапевтического значения.

Резистентность холерного вибриона

Холерный вибрион во внешней среде чувствителен к высушиванию и действию прямых солнечных лучей, но хорошо сохраняется и размножается при температуре выше 10-12ОС в открытых водоемах и сточных водах, богатых органическими веществами. В частности, в водоемах возбудитель сохраняется в течение 2-3 недель.

Холерные вибрионы хорошо сохраняются при низкой температуре: во льду - до 1 месяца; в морской воде - до 47 суток, в речной воде - от 3-5 дней до нескольких недель, в почве - от 8 дней до 3 месяцев. В свежих испражнениях больного возбудитель холеры сохраняется до 3 суток, на белье, загрязненном испражнениями больных, сохраняется до 2 суток, а на влажном материале - неделю.

На вареных продуктах (рис, лапша, мясо, каши и др.) холерные вибрионы выживают в течение 2-5 дней, на сырых овощах - 2-4 дней, на фруктах - 1-2 дней, в молоке и молочных продуктах - 5 дней. При хранении продуктов в холодильнике срок выживания возбудителя увеличивается на 1-3 дня. Холерные вибрионы при 50ОС погибают через 30 минут, при 80ОС - через 5 минут, при 100ОС – через несколько секунд.

Холерные вибрионы очень чувствительны к действию дезинфектантов, особенно с кислым значением рН. В растворе сулемы (1:100000) они погибают через 5 минут. Под влиянием хлорамина и других дезинфектантов погибают через 5-15 минут. Возбудитель высокочувствителен к хлору: доза активного хлора 0,3-0,4 мг/л за 30 минут вызывает надежное обеззараживание предметов.

Эпидемиология

Холера является типичной антропонозной инфекцией. Природный