Горизонтальное, или трансмиссивное распространение возбудителей заболеваний происходит, когда цыплята из инкубатора выходят здоровые, а в период выращивания подвергаются заражению путем прямого или косвенного контакта с больными цыплятами микробоносителями или с обсеменными предметами окружающей среды.
Как отмечает А.А.Закомырдин (1982), в промышленном птицеводстве передача возбудителей болезней чаще происходит при непрямом (косвенном) контакте. Патогенные микроорганизмы, выделяемые больной птицей с экскрементами, слизистыми истечениями, десквамированным эпителием и т.п., попадают на поверхности помещений, оборудования и предметов ухода, в корм, воду, воздух, помет, подстилку, сточные воды, на спецодежду обслуживающего персонала и др. Контаминация объекто внешней среды возможна такие при транспортировке больной птицы, ее убое и переработке. Контактирование здоровой птицы с инфицированными объектами внешней среды, как правило, ведет к заражению птицы.
Автор далее отмечает: более часто патогенные микроорганизмы как внутри хозяйства, так и за его пределы разносятся с различными предметами: тара, транспорт, одежда обслуживающего персонала, помет, подстилка и т.д.
В многочисленных литературных источниках имеются данные о том, что человек с загрязненной обувью, одеждой, запыленными во время пребывания в птичнике, с руками или инструментами (слесари) может стать переносчикам возбудителей различных заболеваний. Бездомные собаки, кошки, грызуны, дикие птицы, насекомые также могут быть разносчиками патогенных микроорганизмов (А.Б.Прохоров, Л.Д.Алмазов, 1932; Wan E.S.Olney 1940; Э.Я.Мозель, В.С. Ярных, М.М.Фазалиев, 1957; И.С.Загаевский, 1966; Л.Ф.Цимох, Н.Г.Сердюк, Н.А.Соловьян, 1967; В.Ф.Глухов, 1968; К.Ш.Гаджиев, 1968, Ю.П.Мозжухина, 1968; С.А.Воробьева, 1968; И.В.Шур, 1970; М.Х.Малтугуева, 1973; А.Ф.Меныш, 1975; Н.М.Остановский, 1976 г. и др.)
Устойчивость возбудителей к химическим и физическим агентам.
Возбудитель пастереллеза. Уничтожение очагов инфекции при различных заболеваниях считается основой профилактики, однако эта цель достигается только путем проведения очистки и дезинфекции объектов внешней среды. Для уничтожения возбудителей во внешней среде необходимо знать объект, который подлежит обеззараживанию, и характеристики дезинфицирующих средств.
В экспериментах испытаны различные химические вещества: серная и сольная кислота, крезол, борная кислота и щелочи в различной концентрации.
И. С. Загаевский (1939) рекомендовал проводить дезинфекцию птичников при холере птиц 5% - ным растворам формалина в течение 6-7 мин, 10% - ным растворам каустической соды - 8 - 10 мин.
Некоторые авторы советуют проводить дезинфекцию деревянных поверхностей 1%-ным раствором формалина, 3%-или 5%-ной смесью лизола с 5%-ным растворам неочищенной карболовой смеси, 5-10%-ным раствором хлорной извести (П.П.Сахаров, И.С.Истомин, 1940; Н.М.Никифорова, 1951, 1958; М.С.Ганнушкин, 1952; П.Н.Андреев, К.П.Андреев, 1954; Я.Е.Коляков, 1960, и др.)
А.А.Поляков, В.Г.Жаров (1960) в своих работах для обеззараживания инфицированных объектов применяли 3%-ный раствор едкого натра при экспозиции 3ч; 2%-ный раствор едкого натра (40-430)-1ч; 0,3-0,4-ный раствор формальдегида -1ч, 3%-ную водную эмульсую креолина - 3 ч при температуре ее 40-400-2ч. Несколько лучше действовал раствор ксилонафта в 5%-ной концентрации - 3 ч.
И.Н.Дорошко и Г.И.Геря (1962) на одной из Киевских птицефабрик сконструировали газовую дезинфекционную установку. Она смонтирована на автомобильном прицепе: установлены газовые баллоны с топливным жидким газом (метан, пропан, бутан). Баллоны поставлены в 3 ряда и соединены питающей трубкой. В каждом ряду имеется манометр, показывающий давление газа, регулируемый редуктором. На штуцер редуктора со стороны низкого давления надет шланг, и газ поступает в инжекторную горелку. Длина пламени 30-40 см, ширина 25-30 см. Рабочий газ под давлением 0,8-1,0 атм сгорает при температуре пламени 1200-13000 на расстоянии 20 см. При помощи газа 200 м2 пола или 100 батарейных клеток для птиц можно обработать в течение 40-45 мин. Газом из баллона массой 10-12 кг можно обработать 2000 клеток для взрослых кур или цыплят.
Ю.Б.Сафаров, Н.А.Абдулгалимов (1969) для обеззараживания поверхностей помещений, территорий скотных дворов и предметов ухода при пастереллезе животных применяли холодный раствор 2%-ного формальдегида или 5%-ный раствор серно-карболовой смеси, 1%-ный осветленный раствор хлорной извести, а также 3%-ный горячий (70-750) раствор едкого натра или 3%-ный раствор креолина и получали хороший результат.
Для обеззараживания поверхностей из глинобита и утрамбованного навоза можно использовать более концентрированные растворы: 3%-ный формальдегида, 5%-ный креолина, 6%-ный едкого натра, 9%-ный серно-карболовой смеси и осветленный раствор хлорной извести, содержащий 5%-активного хлора, 6-ный раствор однохлористого йода.
J.Tchentchev, J.Geunov, J.Mithova (1968) для обеззараживания поверхностного зараженных лиц от P.avicid применяли 4%-ный раствор йодмонохлорида в течение 12 мин, после чего нейтрализовали 4%-ным растворам тиосульфата натрия. Такая дезинфекция полностью предохраняла от заражения этими патогенными культурами.
А.А.Закомырдин, Ю.И.Боченин (1974) для обеззараживания птичников от возбудителя пастереллеза применяли смесь, приготовленную из хлорной извести с формалином в соотношении 1:1. Если хлорная известь содержит 20-21% активного хлора, то количественное соотношение компонентов должен быть 1:1,25. В результате смешивания происходит экзотермическая реакция и выделяется аэрозоль, размеры частиц которого достигают 1 мкм.
W.Muller, B.Best (1971) отмечали, что птичнике количество микроорганизмов в 1 л. воздуха в зависимости от метода содержания птицы достигает 300 тыс. Для обеззараживания воздуха в помещениях они рекомендуют применять 0,1%-ный раствор хлорноватистой кислоты в смеси с 3%-ной эмульсией креолина при экспозиции 5-6 ч. J.Нoyovec, A.Fleser (1971) отмечали, что для аэрозольной дезинфекции воздуха помещений, где содержатся цыплята, пригоден 40%-ный раствор молочной кислоты в дозе 10 мг/м3 помещения.
A.A.Saj (1966) доказал эффективность проведения дезинфекции птицеводческих помещений после основательной механической очистки всех поверхностей, инвентаря и оборудования и после удаления пыли с потолка 3%-ным раствором формалина, 0,5%-ным едким натром и 2%-ным растворам крезола. Расход дезинфицирующих растворов 0,5 л. на 1 м2 площади.
K.G.Lonman (1965) рекомендует дезинфекцию птичников проводить формальдегидом, беря на каждые 50 м2 площади 1 кг технического пергаманганата калия и 2,5 л смеси, состоящей из 40%-ного формалина и воды в соотношении 1:1. Разводить формальдегид следует в эмалированной посуде, заливая перманганат калия разбавленным формалином. При этой работе необходимо пользоваться противогазом и резиновыми перчатками. Автор рекомендует проводить такую дезинфекцию инкубаторов перед закладкой яиц и на 18-й день инкубации. Он предупреждает, что яйца после 24 и до 48ч с начала инкубации дезинфицировать нельзя. Для обеззараживания инкубатора берут 35 мл 40%-ного формалина, 25 г перманганата калия и 17,5 мл воды; смесь наливают в фарфоровый или эмалированный сосуд.
J.Tchentchov, J.Golnov, I.Mitkov (1968) провели обеззараживание поверхностей объектов и яиц, инфицированных P.avixida 4%-ным раствором однохлористого йода. Нейтрализацию остаточного количества дезинфекционного агента на обработанных поверхностях проводили с помощью 4%-ного раствора тиосульфата натрия (гипосульфита) в течение 1-2 мин. Затем яйцо и поверхности обильно орошали стерильным физиологическим растворам. После обработки проводили посевы на питательные среды и одновременно заражали белых мышей, вводя им по 0,5 мл. суспензии. За подопытными животными наблюдали 10 дней. Дезинфекцию проводили в течение 12,15 и 18 мин. Лучшей эффект получен при экспозиции 12 мин.
Возбудитель пуллороза - тифа
По данным М.В.Рево и М.Д.Жуковой (1958), под действием растворов сулемы в разведении 1:1000 и 5%-ного карболовой кислоты погибает в течение 30с, 1%-ного раствора формалина - в течение 5 мин, раствора марганцовокислого калия 1:1000 и 4%-ной хлорной извести - в течение 15 мин.
И.С.Загаевский (1971) отметил слабое действие известкового молока на S.gallinarum, а 3%-ный раствор едкого натра убивал возбудителя тифа птиц в течение 30 мин, в то время как 0,1%-ный раствор фенола, и 2%-ный раствор формалина инактивировали возбудителя в течение 5 мин.
А.А.Поляков (1956, 1958, 1960, 1961, 1966, 1975) убедительно доказал, что S.gallinarum довольно устойчива к действию химических дезинфекцирующих веществ. Он рекомендовал при тифе птиц проводить дезинфекцию птицеводческих помещений 20%-ной взвесью свежегашеной извести путем двукратной побелки с интервалам 1ч, раствором хлорной извести, содержащим 2%-активного хлора, 2%-ным растворам едкого натра, 5%-ным растворам креолина, 5%-ным растворам ксилонафта, 2%-ным растворам формальдегида или 10%-ным горячим (60-700) раствором кальцинированной соды. После 3-часовой экспозиции только через час он разрешат вводить птицу в помещение. Автор указал также на применение аэрозолей химических средств, для чего рекомендует 40-35%-ный раствор формальдегида или формалин-креолиновую или ксилонафтовую смесь в соотношении 3:1, расход 25 мл на 1м3 помещения, экспозиция 6 ч.
Вопросу устойчивости возбудителя пуллороза против действия химических веществ посвящено значительно количество работ. L.Rettger (1900) сообщил, что 0,001%-ный раствор сулемы или 0,5-ный раствор карболовой кислоты убивает бактерии пуллороза в течение 5 мин, раствор перменганата калия в разведении 1:1000 - в течение 10 мин.
F.Croner (1902) для дезинфекции птичников при пуллороза предложил растворы 5%-ной карболовой кислоты, 2%-ного лизола, 3%-ного креолина при экспозиции 1 ч.
В. Садовский (1940), С.Н.Мачульский и П.С.Бутырина (1943) установили, что 3%-ный раствор креолина или карболовой кислоты, 1-ный раствор формалина убивают бактерии за несколько минут. Они рекомендуют их для дезинфекции инкубаторов.
Я.Е. Коляков (1952-1960) отметил, что агаровая культура S.pullorum, смытая физиологическим раствором, при действии 1%-ным раствором формалина, 1%-ным раствором фенола и раствором сулемы в соотношении 1:1000 обеззараживается в течение 5 мин, при действии 4%-ным раствором хлорной известии - 15 мин.
П.М.Сопиков (1953) указал, что при действии на бульонную культуру бактерий пуллороза раствором марганцовокислого калия в соотношении 1:20000 гибель микробов наступала в течение 15 мин, 1%-ным раствором формалина - 5 мин, а 5%-ным раствором карболовой кислоты - S.pullorum погибали через 30 мин.
По данным А.Д.Криночкина (1957), дезинфекцирующее действие на S.рullorum оказывает 0,1%-ный раствор щелочи в течение 160 мин, а 0,5%-ный - 75 мин.
М.В.Рево, М.Д.Жукова (1958) сообщили, что на S.pullorum губительно действие оказывают 1%-ный раствор карболовой кислоты, раствор сулемы в разведении 1:1000, 1%-ный раствор формалина в течение 0,5-5 мин, 4%-ный раствор хлорной извести - в течение 15 мин.
Проведенные нами в 1963 г. опыты в производственных условиях по дезинфекции птицеводческих помещений (деревянные, кирпичные и асфальтовые поверхности) показали, что обеззараживание их от возбудителя пуллороза достигалось: 10%-ным горячим (70-800) или 15-20%-ным холодным (16-180) раствором кальцинированной соды при экспозиции 3ч; 4%-ным (60-700) или 5-6%-ным (16-180) раствором нафтализола при экспозиции 2-3; 2%-ным (60-700) или 3-5%-ным холодным растворам едкого натра при экспозиции 3ч; 0,5%-ным растворам формальдегида при экспозиции 1-2 ч; осветленным раствором хлорной извести с 3 и 5% активного хлора, 20% взвесью свежегашеной извести при экспозиции 2-3 ч; 5-6%-ной эмульсией креолина при экспозиции 3 ч.
Возбудитель паратифа. А.А.Поляков (1966) отметил, что действие химических веществ на микроорганизм зависит от его биологических особенностей, от того, где происходит взаимодействие (контакт) между микробом и химическим веществом, а также от концентрации препарата, экспозиции его применения, температуры и других факторов.
Микроорганизмы, попав на объекты внешней среды, в зависимости от дисперсной фазы, субстанции, в которой они находятся, частично остаются на поверхности, а частично по мельчайшим капиллярам и порам проникают в глубь. Следовательно, контакте с ними дефицирующих растворов весьма затруднен. T.Schmit (1958) в свей работе отметил, что бульонная культура кишечной палочки и золотистого стафилококка внедряется в толщу деревянного объекта на глубину 1,5 мм, а в гипс - на 2,8 мм.
Н.И.Остановский (1976) провел опыты по определению проницаемости кульутр салмонелл (S.typhimurium) в глубь деревянной поверхности. Он обрабатывал поверхность 0,5 мл микробной взвеси, содержащей 2 млрд. бактерий в 1 мл. Через 18 ч обнаружил проницаемость микробов на глубину 1 мм, а через 24-26 ч в более глубоких слоях.
С.Я.Любашенко и И.А.Бузанов (1940) установили, что хорошими дезинфицирующими свойствами против возбудителя S.suipestifer обладают серная и соляная кислоты, хлорная известь, креолин.
В.И.Вашков (1960) указал на бактерицидное действие хлорамина и одновременно сообщил, что при его применении необходимо учитывать рН среды (воды), так как в щелочной среде активность действия препарата снижается в 2 раза.