Материал: Введение в иммуноцитохимию современные методы и проблемы, Мир, М., 1987

Внимание! Если размещение файла нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам

3. Условия для проведения иммуноцитохимии

21

реакцию по желанию можно остановить. Необходимо конт­ ролировать соотношение количества флуоресцентной или ферментной метки с количеством антител при конъюгации. Избыток метки может повлиять на активность антител; несвязавш ую ся метку необходимо удалить до использования антител путем диализа или колоночной хроматографии. Все молекулы антител должны нести метку, так как немеченые

лнтитела будут конкурировать с мечеными за

антиген и,

та ­

ким образом, снижать количество видимого

продукта

ре­

акции.

 

 

Помимо ферментных методов с использованием немеченых антител было предложено еще несколько способов усиления интенсивности окраски при пероксидазной реакции. Эти ме­ тоды основаны либо на повышении чувствительности реакции, что позволяет выявлять меньшее количество антигена при той же концентрации антител, либо на повышении специфичности реакции. В этом случае то ж е самое количество антигена уда­ ется выявить при меньшей концентрации антител, что дает

возможность

вывести

из реакции загрязняю щ ие

антитела за

счет разведения. Д ля

докраш ивания ядер

или

компонентов

ткани нужно

выбирать

такие

реагенты, которые обеспечат

контрастный

фон и не

снизят

интенсивности

основного окра­

шивания.

Дл я световой микроскопии окраску золотом (см. разд. 6.4) можно усилить при помощи эпиполяризационной оптики (см.

разд.

1 0 ) или

нового

метода, основанного на осаждении се­

ребра

(H olgate

et al.,

1938, а, b). Что ж е касается электронной

микроскопии, то преимущество коллоидного золота как метки состоит в том, что его частицы лучше видны на фоне докра­ шенного обычными способами препарата, чем продукт перо­

ксидазной

реакции

после

проявления

диаминобензидином

(ДА Б)

и обработки

осмием.

 

М етод

мечения

антител флуоресцеинизотиоцианатом

(Ф ИТЦ )

прост и вкратце

сводится к

следующему (Stern-

berger,

1979):

 

 

 

1 )

выделение IgG;

 

 

2)реакция с Ф ИТЦ при щелочном pH и правильном соот­ ношении реагента и антител;

3)очистка антител от свободного Ф ИТЦ на колонке с сефадексом G25;

4)разделение меченых и немеченых IgG на колонке с ДЭАЭ-целлюлозой.

При мечении пероксидазой для

присоединения

фермента

к антителам

используют, например,

глутаровый

альдегид.

Приготовить

ПАП -комплекс сложнее; для этого требуется до­

полнительная очистка. При мечении золотом антитела присое­

22 3. Условия для проведения иммуноцитохимии

диняют к частицам золота за счет нековалентной адсорбции. Эти реактивы можно купить. Они, конечно, дороги, однако* их стоимость частично компенсируется экономией времени и:

усилий, которые тратятся на приготовление собственных реа­ гентов.

Все антитела, собственного производства или приобретен­ ные, перед употреблением необходимо оттитровать на заве­ домо положительном материале, для того чтобы найти рабо­ чее разведение, которое зависит такж е и от времени окраш и­ вания. Короткая инкубация (10— 60 мин) требует более высо­ кой концентрации антител, чем длительная (12— 24 ч), и не­ редко приводит к повышению неспецифического связывания,,

так

как в этом случае не происходит необходимого разведе­

ния

загрязняю щ их антител.

4. ИММУНОФЛУОРЕСЦЕНТНЫЕ МЕТОДЫ

4.1. Прямой метод

Исходная методика

окраш ивания, разработанная

Кунсом

(Coons, K aplan, 1950),

была одностадийной

(прямой);

в этом

случае Ф И ТЦ присоединяли прямо к специфическим

антите­

лам . Меченую антисыворотку разводили

физиологическим

раствором, забуференным с помощью фосфата (ЗФ Ф Р ), а за ­ тем наносили на срез ткани и после инкубации несвязавшие-

ся антитела удаляли, промывая

срез ЗФ Ф Р.

Окрашенный

срез

просматривали в микроскоп

с ультрафиолетовой опти­

кой;

при этом в точках связывания антител

наблю дали яб­

лочно-зеленую флуоресценцию (рис. 3).

4.2. Непрямой метод

Оригинальная методика была модифицирована, -и сейчас широко используется непрямой метод (Coons et al., 1955; рис. 4 и 5, а такж е фото 1). В этом случае за первыми спе­ цифическими немечеными антителами следует второй слой, содержащ ий антитела к у-глобулинам животного, донора пер­ вых антител, например козьи антитела к у-глобулинам кро­ лика, меченные ФИТЦ . Первые антитела (кроличьи), связав­ шиеся с участками среза ткани, содержащ ими нужный анти­ ген, в свою очередь служ ат антигеном для вторых флуорес­ центных антител (рис. 6 ).

Достоинства метода

1. Антисыворотки к IgG обычно имеют высокий титр и авидность.

2.С каждой молекулой первого (специфического) анти­ тела могут связаться две меченые молекулы антииммуногло­ булинов, что увеличивает чувствительность метода.

3.Экономичность. Один препарат флуоресцентных антител второго слоя может быть использован для окраш ивания мно­ жеством первых антител, взаимодействующих с разнообраз­ ными антигенами; необходимо только, чтобы все они были по­ лучены при использовании животных одного вида, а именно

того, к IgG

которого специфичны антитела

второго

слоя.

В настоящее

время налаж ен выпуск меченых

антител

для

24 4. Иммунофлуоресцентные методы

Специфическая реакция антиген—антитело с мечеными

первыми антителами

Связывание с Fc-Образование гидрофобных и

Загрязняющие антитела

рецепторами (только на

электростатических связей (специфические, но ненужные^

нефиксированной ткани)

между мечеными Ig и

 

компонентами ткани

 

ч*

" < 3vV

|АГ

!А[

Блокирование

Блокирование гидрофобных

Осуществление специфичес-

Fc-рецепторов

и электростатических

ких реакций с участием

 

взаимодействий

основных и загрязняющих

 

 

антител

Рис. 3. Прямой метод. А. Первые антитела конъюгированы с флуоресцеиноь® (или с пероксидазой). Неспецифические антитела также оказываются ме­ чеными. Б. Показаны некоторые неспецифические реакции, связанные с возникновением гидрофобных и электростатических взаимодействий между иммуноглобулинами и компонентами ткани, а также реакции загрязняющих антител с антигенами ткани. Путем обработки срезов неконъюгированной неиммунной сывороткой животного, донора антител, или инертным белком, таким, как альбумин, до инкубации с первыми антителами эти реакции можно частично блокировать. В. Метод удобен для окрашивания по двум? антигенам одновременно; в этом случае два препарата первых антител ме­ тят разными метками, например родаминизотиоцианатом и флуоресцеини-

зотиоцианатом (Valnes, B randtzaeg, 1982).

4. Иммунофлуоресцентные методы

25

Рис. 4. Срез толстого кишечника человека. Окрашивание проводили с по­ мощью непрямого иммунофлуоресцентного метода с использованием кро­ личьих антител к глюкагону и конъюгированных с флуоресцеином козьих

антител к IgG кролика. Видны энтероглюкагоновые клетки;

 

основание

флуоресцирующих клеток покоится на базальной мембране

(стрелка), апи­

кальная поверхность обращена

к просвету. Подготовка

ткани:

ткань

фиксировали раствором я-бензохинона; толщина криостатных

 

срезов —

6 мкм.

 

 

 

 

 

второго слоя. Помимо флуоресцеина используют

и

другие

метки, например родамин,

флуоресцирующий

в

оранж ево­

красной области, однако интенсивность свечения у

 

него

ни­

же, чем у ФИТЦ . Родамин обычно используют при

окраш и­

вании по двум антигенам

одновременно.

 

 

 

 

3— 1203