9. Область применения иммуноцитохимических методов |
51 |
Рис. 19. Срез опухоли поджелудочной железы, секретирующей глюкагон. Окрашен при помощи метода пероксидазы — антипероксидазы. Обратите внимание на зону пролиферации в опухоли, содержащую глюкагон-положи- тельные клетки (отмечены стрелками). Подготовка ткани: ткань фиксиро вали раствором Боуина, галивали в парафин; толщина среза — 4 мкм, до крашено гематоксилином.
нии в тех случаях, когда |
происхождение опухоли не ясно. |
||
Опухоли печени, так ж е |
как и |
опухоли желтого тела, |
часто |
содерж ат а-1-фетопротеин. |
|
|
|
Белок, родственный фактору |
V III, служит маркером |
опу~ |
|
холей эндотелиального происхождения, нейрон-специфическая энолаза маркирует опухоли нервной ткани и эндокринной системы, а глиальный фибриллярный кислый белок — опухо ли глии. Тип обнаруживаемых иммуноглобулинов и их лока лизация очень важны при диагностике многих заболеваний почек и кожи, для ряда других заболеваний характерно при сутствие в кровотоке аутоантител, которые можно обнару жить при окрашивании нормальной ткани сывороткой боль ного. При помощи специфических антител можно обнаружить и идентифицировать микроорганизмы. Опухоли эндокринной
системы желудочно-кишечного тракта |
и поджелудочной |
ж е |
||
лезы, |
а такж е гипофиза идентифицируют при |
помощи анти |
||
тел к |
пептидным гормонам (рис. 19). |
(Более |
подробно |
см. |
Polak, |
V an Noorden, 1983.) |
|
|
|
529. Область применения иммуноцитохимических методов
9.2.Количественный анализ
Разработаны методы количественного анализа иммуно цитохимических данных, при этом особое внимание уделяет
ся стандартизации методов |
и выбору анализируемого п ара |
||
метра. Д ля |
решения такого |
рода |
задач можно использовать |
анализатор |
телевизионного |
изображения, оценивающий ин |
|
тенсивность |
окраски относительно |
'неокраш енных участков |
|
ткани. Таким способом недавно удалось продемонстрировать, что в некоторых случаях неонатальной гипогликемии наблю дается не только рост числа клеток, продуцирующих инсу лин, но и снижение количества клеток, синтезирующих соматостатин, что указывает на нарушение нормальной системы
регуляции, осуществляемой |
путем ингибирования |
соматоста- |
||
тином продукции |
инсулина |
(Polak, |
Bloom, 1980). |
|
Разработанный |
недавно |
метод |
окраш ивания |
тотальных |
препаратов слизистой и подслизистой кишечной стенки, осво божденной от мышечного слоя, позволяет оценить количество
эндокринных клеток |
определенных |
типов |
в образце (Ferri |
|
et |
al., 1982). |
|
|
|
|
Сравнительную оценку количества гормона, приходящ его |
|||
ся |
на одну гранулу, |
можно провести |
в том |
случае, когда в |
качестве метки используют золото или ферритин; при этом
просто |
считают количество |
частиц, |
леж ащ их на срезе |
грану |
лы (см. |
K raehenbuhl et al., |
1980). |
В настоящ ее время |
имму- |
ноцитохимические методы не позволяют определить количе ство антигена в ткани, но с помощью дополнительной инфор мации, которую даю т радиоиммунологический анализ ткани или образцов сыворотки и изучение ультраструктуры ткани, можно получить представление о секреторной активности ткани и скорости обмена продукта в ней.
9.3. Фундаментальные исследования
Примеры применения иммуноцитохимических методов слишком многочисленны, чтобы их здесь перечислять. Д оста точно сказать о том, что иммуноцитохимический подход мо жет сочетаться с другими методами, такими, как радиоавто графия, гистохимическое окрашивание, идентификация био генных аминов по флуоресценции, индуцированной формаль дегидом.
9.4. Будущее метода
Иммуноцитохимические методы будут обязательно исполь зоваться для локализации антигенов в ткани. Безусловно,
9. Область применения иммуноцитохимических методов |
53 |
должны совершенствоваться методы подготовки ткани и по лучения специфических препаратов антител.
Будут использоваться и другие неиммунологические ме тоды специфической маркировки, возможно в сочетании с иммуноцитохимическими методами. Например, уж е разработа ны методы локализации гормонов, меченных радиоактивными
изотопами, |
на рецепторах при |
помощи |
радиоавтографии |
||
(K uhar, |
Uhl, |
1979). Иммуноцитохимический |
подход уж е |
при |
|
менялся |
для |
изучения рецепторов, |
причем |
в некоторых |
слу |
чаях даж е на фиксированных парафиновых срезах (Taylor et al., 1981). Поскольку фиксация и заливка, вероятно, повре ждаю т рецепторы (Salih et al., 1979), в дальнейшем методы окраш ивания при помощи антител для изучения антигенов, связанных с рецепторами на поверхности клетки или после
интернализации, |
будут |
применяться |
на |
суспензии |
клеток |
||||
(Goldsm ith et al., |
1979) или на ультратонких срезах |
(Tokuya- |
|||||||
su, 1980, |
1983; W illingham et |
al., 1980); |
в |
настоящ ее время |
|||||
исследования такого рода только начинаются. |
|
||||||||
Количественный |
анализ, |
заключающ ийся в построении |
|||||||
трехмерного компьютерного |
изображения |
иммунохимически |
|||||||
окрашенного объекта,— вопрос ближайш его будущего. |
|||||||||
Разрабаты ваю тся |
еще более чувствительные методы лока |
||||||||
лизации |
внутриклеточных |
компонентов. |
Меченную |
радиоак |
|||||
тивными |
изотопами |
рекомбинантную |
Д Н К |
уже используют |
|||||
для локализации комплементарной ей информационной РН К , что дает возможность выявить точки синтеза пептида в цито
плазме, |
отличая их от мест хранения |
(Pochet et al., 1981; |
H udson |
et al., 1981). Сочетание этого |
нового перспективного |
подхода с иммуноцитохимическими методами поможет отве тить на множество вопросов, касающ ихся локализации мест
синтеза |
и хранения клеточных продуктов, а такж е синтеза в |
одной и |
той ж е клетке одновременно или последовательно |
двух или нескольких веществ.
10. МИКРОСКОПИЯ
Иммунофлуоресцентные препараты |
нужно просматривать |
в микроскоп с системой освещения, |
обеспечивающей свет |
такой длины волны, при которой наблю дается максимальное возбуждение флуоресцентной метки. В тех случаях, когда име ется видимый продукт реакции, например при окрашивании пероксидазой, препараты просматривают в обычный микро скоп, который может быть снабжен приспособлениями для темного поля, эпиполяризации или дифференциально-интер ференционного контраста по Номарскому.
Флуоресценцию принято наблю дать в системе эпииллю минации, когда падающий свет проходит через линзы объек тива, который в данном случае функционирует как конден сор, и фокусируется на образце. Испускаемый свет проделы вает тот ж е путь в обратном направлении к глазу. При этом падающий свет не поглощается предметным стеклом, на ко тором леж ит образец. Система эпилюминесценции позволяет следить за флуоресценцией и рассматривать препарат в про ходящем свете или при помощи фазово-контрастной оптики; таким образом, одновременно могут быть видны окрашенные и неокрашенные флуоресцентным красителем части образца.
Обычно источником света при работе с иммунофлуоресцентными препаратами служит ртутная или ксеноновая л ам па, а свет, длина волны которого обеспечивает максимальное
возбуждение флуорохрома, на пути к образцу |
проходит че |
рез соответствующие фильтры. Если в работе |
используют |
и родамин, и флуоресцеин, микроскоп должен быть оснащен двумя наборами фильтров. Красное свечение родамина и зе леное свечение флуоресцеина нельзя увидеть одновременно, так как длина волны максимального возбуждения у этих ве ществ разная (родамин — 530 нм, флуоресцеин — 495 нм). Если препарат был окрашен по двум антигенам одновремен но (например, Т-лимфоциты — родамином, а В-лимфоциты — флуоресцеином), то его сначала нужно просмотреть с одним
набором фильтров, |
а потом с другим. |
М ожно провести двой |
ную экспозицию на |
один кадр пленки |
так, что на одной и |
той ж е фотографии |
будут видны и красные и зеленые клетки, |
|
а участки ткани, содержащ ие обе метки, окажутся оранж евы ми. Этот метод может потребоваться, например, при провер-
10. Микроскопия |
55 |
Рис. 20. Срез мозга человека. Видны нормальные астроциты, окрашенные при помощи ПАП-метода антителами к глиальному фибриллярному кисло му белку (Л). Обратите внимание на усиление, которого удается добиться при помощи интерференционно-контрастной оптической системы Номарского (В). Подготовка ткани: ткань фиксировали формалином и заливали в парафин. Срез (6 мкм) до окрашивания был обработан трипсином. Д окра шено гематоксилином.
ке сыворотки на присутствие аутоантител к клеткам, проду цирующим гастрин; при этом проводят окраш ивание среза стенки кишечника исследуемой сывороткой и антителами к гастрину (Scherbaum et al., 1983), или для того, чтобы от личить одну популяцию клеток от другой (Valnes, B randtzaeg, 1982).
При работе с пероксидазой, щелочной фосфатазой, други ми ферментными метками или с коллоидным золотом продукт реакции можно наблю дать в обычный микроскоп в проходя щем свете. Н а многих препаратах слабоокрашенные или очень тонкие структуры, например нервные волокна, лучше видны, если при просмотре используют дифференциально-интерфе ренционный метод Номарского, так как в этом случае изо бражение рельефно и окрашенные участки образуют выпук лости и вогнутости на плоском фоне (рис. 20).
Если в качестве метки при работе на световом уровне ис пользуют коллоидное золото или серебро, то интенсивность окраски, особенно на тонких (1 мкм) срезах при нормальной системе освещения, может быть довольно низкой. С помощью темного поля можно добиться эффекта усиления за счет от раж ения света частицами металла; в этом случае объект светится. Еще большее усиление обеспечивает эпиполяриза ция (D eM ey, 1983b).
Фотографировать препараты нужно только на подходящую для этого пленку. Kodak техническую пан 2415 используют