Материал: Введение в иммуноцитохимию современные методы и проблемы, Мир, М., 1987

Внимание! Если размещение файла нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам

9. Область применения иммуноцитохимических методов

51

Рис. 19. Срез опухоли поджелудочной железы, секретирующей глюкагон. Окрашен при помощи метода пероксидазы — антипероксидазы. Обратите внимание на зону пролиферации в опухоли, содержащую глюкагон-положи- тельные клетки (отмечены стрелками). Подготовка ткани: ткань фиксиро­ вали раствором Боуина, галивали в парафин; толщина среза — 4 мкм, до­ крашено гематоксилином.

нии в тех случаях, когда

происхождение опухоли не ясно.

Опухоли печени, так ж е

как и

опухоли желтого тела,

часто

содерж ат а-1-фетопротеин.

 

 

Белок, родственный фактору

V III, служит маркером

опу~

холей эндотелиального происхождения, нейрон-специфическая энолаза маркирует опухоли нервной ткани и эндокринной системы, а глиальный фибриллярный кислый белок — опухо­ ли глии. Тип обнаруживаемых иммуноглобулинов и их лока­ лизация очень важны при диагностике многих заболеваний почек и кожи, для ряда других заболеваний характерно при­ сутствие в кровотоке аутоантител, которые можно обнару­ жить при окрашивании нормальной ткани сывороткой боль­ ного. При помощи специфических антител можно обнаружить и идентифицировать микроорганизмы. Опухоли эндокринной

системы желудочно-кишечного тракта

и поджелудочной

ж е­

лезы,

а такж е гипофиза идентифицируют при

помощи анти­

тел к

пептидным гормонам (рис. 19).

(Более

подробно

см.

Polak,

V an Noorden, 1983.)

 

 

 

529. Область применения иммуноцитохимических методов

9.2.Количественный анализ

Разработаны методы количественного анализа иммуно­ цитохимических данных, при этом особое внимание уделяет­

ся стандартизации методов

и выбору анализируемого п ара­

метра. Д ля

решения такого

рода

задач можно использовать

анализатор

телевизионного

изображения, оценивающий ин­

тенсивность

окраски относительно

'неокраш енных участков

ткани. Таким способом недавно удалось продемонстрировать, что в некоторых случаях неонатальной гипогликемии наблю ­ дается не только рост числа клеток, продуцирующих инсу­ лин, но и снижение количества клеток, синтезирующих соматостатин, что указывает на нарушение нормальной системы

регуляции, осуществляемой

путем ингибирования

соматоста-

тином продукции

инсулина

(Polak,

Bloom, 1980).

 

Разработанный

недавно

метод

окраш ивания

тотальных

препаратов слизистой и подслизистой кишечной стенки, осво­ божденной от мышечного слоя, позволяет оценить количество

эндокринных клеток

определенных

типов

в образце (Ferri

et

al., 1982).

 

 

 

 

Сравнительную оценку количества гормона, приходящ его­

ся

на одну гранулу,

можно провести

в том

случае, когда в

качестве метки используют золото или ферритин; при этом

просто

считают количество

частиц,

леж ащ их на срезе

грану­

лы (см.

K raehenbuhl et al.,

1980).

В настоящ ее время

имму-

ноцитохимические методы не позволяют определить количе­ ство антигена в ткани, но с помощью дополнительной инфор­ мации, которую даю т радиоиммунологический анализ ткани или образцов сыворотки и изучение ультраструктуры ткани, можно получить представление о секреторной активности ткани и скорости обмена продукта в ней.

9.3. Фундаментальные исследования

Примеры применения иммуноцитохимических методов слишком многочисленны, чтобы их здесь перечислять. Д оста­ точно сказать о том, что иммуноцитохимический подход мо­ жет сочетаться с другими методами, такими, как радиоавто­ графия, гистохимическое окрашивание, идентификация био­ генных аминов по флуоресценции, индуцированной формаль­ дегидом.

9.4. Будущее метода

Иммуноцитохимические методы будут обязательно исполь­ зоваться для локализации антигенов в ткани. Безусловно,

9. Область применения иммуноцитохимических методов

53

должны совершенствоваться методы подготовки ткани и по­ лучения специфических препаратов антител.

Будут использоваться и другие неиммунологические ме­ тоды специфической маркировки, возможно в сочетании с иммуноцитохимическими методами. Например, уж е разработа­ ны методы локализации гормонов, меченных радиоактивными

изотопами,

на рецепторах при

помощи

радиоавтографии

(K uhar,

Uhl,

1979). Иммуноцитохимический

подход уж е

при­

менялся

для

изучения рецепторов,

причем

в некоторых

слу­

чаях даж е на фиксированных парафиновых срезах (Taylor et al., 1981). Поскольку фиксация и заливка, вероятно, повре­ ждаю т рецепторы (Salih et al., 1979), в дальнейшем методы окраш ивания при помощи антител для изучения антигенов, связанных с рецепторами на поверхности клетки или после

интернализации,

будут

применяться

на

суспензии

клеток

(Goldsm ith et al.,

1979) или на ультратонких срезах

(Tokuya-

su, 1980,

1983; W illingham et

al., 1980);

в

настоящ ее время

исследования такого рода только начинаются.

 

Количественный

анализ,

заключающ ийся в построении

трехмерного компьютерного

изображения

иммунохимически

окрашенного объекта,— вопрос ближайш его будущего.

Разрабаты ваю тся

еще более чувствительные методы лока­

лизации

внутриклеточных

компонентов.

Меченную

радиоак­

тивными

изотопами

рекомбинантную

Д Н К

уже используют

для локализации комплементарной ей информационной РН К , что дает возможность выявить точки синтеза пептида в цито­

плазме,

отличая их от мест хранения

(Pochet et al., 1981;

H udson

et al., 1981). Сочетание этого

нового перспективного

подхода с иммуноцитохимическими методами поможет отве­ тить на множество вопросов, касающ ихся локализации мест

синтеза

и хранения клеточных продуктов, а такж е синтеза в

одной и

той ж е клетке одновременно или последовательно

двух или нескольких веществ.

10. МИКРОСКОПИЯ

Иммунофлуоресцентные препараты

нужно просматривать

в микроскоп с системой освещения,

обеспечивающей свет

такой длины волны, при которой наблю дается максимальное возбуждение флуоресцентной метки. В тех случаях, когда име­ ется видимый продукт реакции, например при окрашивании пероксидазой, препараты просматривают в обычный микро­ скоп, который может быть снабжен приспособлениями для темного поля, эпиполяризации или дифференциально-интер­ ференционного контраста по Номарскому.

Флуоресценцию принято наблю дать в системе эпииллю ­ минации, когда падающий свет проходит через линзы объек­ тива, который в данном случае функционирует как конден­ сор, и фокусируется на образце. Испускаемый свет проделы­ вает тот ж е путь в обратном направлении к глазу. При этом падающий свет не поглощается предметным стеклом, на ко­ тором леж ит образец. Система эпилюминесценции позволяет следить за флуоресценцией и рассматривать препарат в про­ ходящем свете или при помощи фазово-контрастной оптики; таким образом, одновременно могут быть видны окрашенные и неокрашенные флуоресцентным красителем части образца.

Обычно источником света при работе с иммунофлуоресцентными препаратами служит ртутная или ксеноновая л ам ­ па, а свет, длина волны которого обеспечивает максимальное

возбуждение флуорохрома, на пути к образцу

проходит че­

рез соответствующие фильтры. Если в работе

используют

и родамин, и флуоресцеин, микроскоп должен быть оснащен двумя наборами фильтров. Красное свечение родамина и зе­ леное свечение флуоресцеина нельзя увидеть одновременно, так как длина волны максимального возбуждения у этих ве­ ществ разная (родамин — 530 нм, флуоресцеин — 495 нм). Если препарат был окрашен по двум антигенам одновремен­ но (например, Т-лимфоциты — родамином, а В-лимфоциты — флуоресцеином), то его сначала нужно просмотреть с одним

набором фильтров,

а потом с другим.

М ожно провести двой­

ную экспозицию на

один кадр пленки

так, что на одной и

той ж е фотографии

будут видны и красные и зеленые клетки,

а участки ткани, содержащ ие обе метки, окажутся оранж евы ­ ми. Этот метод может потребоваться, например, при провер-

10. Микроскопия

55

Рис. 20. Срез мозга человека. Видны нормальные астроциты, окрашенные при помощи ПАП-метода антителами к глиальному фибриллярному кисло­ му белку (Л). Обратите внимание на усиление, которого удается добиться при помощи интерференционно-контрастной оптической системы Номарского (В). Подготовка ткани: ткань фиксировали формалином и заливали в парафин. Срез (6 мкм) до окрашивания был обработан трипсином. Д окра­ шено гематоксилином.

ке сыворотки на присутствие аутоантител к клеткам, проду­ цирующим гастрин; при этом проводят окраш ивание среза стенки кишечника исследуемой сывороткой и антителами к гастрину (Scherbaum et al., 1983), или для того, чтобы от­ личить одну популяцию клеток от другой (Valnes, B randtzaeg, 1982).

При работе с пероксидазой, щелочной фосфатазой, други­ ми ферментными метками или с коллоидным золотом продукт реакции можно наблю дать в обычный микроскоп в проходя­ щем свете. Н а многих препаратах слабоокрашенные или очень тонкие структуры, например нервные волокна, лучше видны, если при просмотре используют дифференциально-интерфе­ ренционный метод Номарского, так как в этом случае изо­ бражение рельефно и окрашенные участки образуют выпук­ лости и вогнутости на плоском фоне (рис. 20).

Если в качестве метки при работе на световом уровне ис­ пользуют коллоидное золото или серебро, то интенсивность окраски, особенно на тонких (1 мкм) срезах при нормальной системе освещения, может быть довольно низкой. С помощью темного поля можно добиться эффекта усиления за счет от­ раж ения света частицами металла; в этом случае объект светится. Еще большее усиление обеспечивает эпиполяриза­ ция (D eM ey, 1983b).

Фотографировать препараты нужно только на подходящую для этого пленку. Kodak техническую пан 2415 используют