Обследовано 43 больных СД 2 (10 мужчин и 33 женщины) в возрасте от 39 до 60 лет. Длительность диабета у пациентов варьировала от 1 месяца до 21 года, при этом 19 человек страдали СД 2 менее 5 лет, а 24 - более 5 лет. Показатели метаболизма глюкозы указывали на декомпенсированное течение заболевания у всех пациентов с СД 2 (декомпенсацию углеводного обмена у пациентов с СД 2 считали при показателе НbА1с выше 7,0%). Среди пациентов с СД 2 была выделена группа больных (17 человек), у которых верифицирован диагноз ишемическая болезнь сердца (ИБС). Из них только 2 больных имели нормальный индекс массы тела, 9 человек страдали ожирением 1 степени (индекс массы тела 30,0-34,9 кг/м2), 4 пациента - ожирением 2 степени (35,0-39,9 кг/ м2), 1 человек - ожирением 3 степени. 14 пациентов с СД 2 страдали только ожирением без ИБС, причем у 4 пациентов было отмечено ожирение 1 степени, у 5 больных - 2 степени и у 5 человек - 3 степени.
Таблица 1
Распределение здоровых доноров, больных сахарным диабетом типа 1 и 2, экспериментальных животых на группы в соответствии с использованными методами исследования липидного спектра крови и структурно-функциональных особенностей мембраны эритроцитов
|
№ |
Методы исследования |
Группы обследованных больных |
Экспериментальные животные (крысы) |
||||
|
Здоровые доноры |
Пациенты сахарным диабетом типа 1 |
Пациенты сахарным диабетом типа 2 |
Количество контрольных проб |
Количество опытных проб |
|||
|
1 |
Исследование липидного спектра крови методом малоуглового рентгеновского рассеяния |
20 |
19 |
43 |
- |
- |
|
|
2 |
Оценка липид-липидных и белок-липидных взаимодействий в мембранах эритроцитов с использованием флуоресцентного зонда пирен |
20 |
25 |
41 |
- |
- |
|
|
3 |
Определение активности Na+, K+-АТФазы в мембранах эритроцитов |
18 |
25 |
40 |
- |
- |
|
|
4 |
Исследование липидного состава мембран эритроцитов методом тонкослойной хроматографии |
12 |
14 |
23 |
- |
- |
|
|
5 |
Определение количественного содержания общих липидов в мембранах эритроцитов |
12 |
14 |
23 |
- |
- |
|
|
6 |
Исследование структуры мембран эритроцитов с использованием флуоресцентного зонда пирен при инкубации мембранной взвеси с липопротеинами высокой плотности in vitro |
- |
- |
- |
12 |
12 |
|
|
7 |
Исследование структуры мембран эритроцитов с использованием флуоресцентного зонда пирен при инкубации мембранной взвеси с липопротеинами низкой плотности in vitro |
- |
- |
- |
9 |
9 |
|
|
8 |
Исследование структуры мембран эритроцитов с использованием флуоресцентного зонда пирен при инкубации мембранной взвеси с липопротеинами очень низкой плотности in vitro |
- |
- |
- |
9 |
9 |
|
|
9 |
Исследование структуры мембран эритроцитов с использованием флуоресцентного зонда пирен при инкубации мембранной взвеси с аполипопротеином А-I in vitro |
- |
- |
- |
6 |
6 |
|
|
10 |
Исследование структуры мембран эритроцитов с использованием флуоресцентного зонда пирен при инкубации мембранной взвеси с аполипопротеином С in vitro |
- |
- |
- |
6 |
6 |
|
|
11 |
Исследование структуры мембран эритроцитов с использованием флуоресцентного зонда пирен при инкубации мембранной взвеси с аполипопротеином Е in vitro |
- |
- |
- |
6 |
6 |
Все пациенты обследованы в момент диспансеризации на фоне проведения коррегирующей углеводный обмен терапии (препараты групп сульфанилмочевины и бигуанидов для больных СД 2 и инсулинотерапия для пациентов с СД 1). Материалом исследования явилась венозная кровь обследованных лиц, взятая утром натощак после шестнадцатичасового воздержания от приема жирной пищи. Для получения плазмы кровь стабилизировали гепарином (25 Ед/мл).
Определение фракционного и субфракционного составов липопротеинов сыворотки крови было проведено с помощью метода малоуглового рентгеновского рассеяния, предложенного Ф.В. Тузиковым и соавт. [1997]. Нами учитывались концентрации липопротеинов 6 основных подклассов (2 субфракции ЛПВП, 2 субфракции ЛПНП и 2 субфракции ЛПОНП) и величина таких интегральных показателей как общий холестерин и общие триацилглицериды. Также были рассчитаны отношение общих фосфолипидов к общему холестерину и индекс атерогенности. Индекс атерогенности рассчитывался как отношение (ОХС-ХС ЛПВП)/ХС ЛПВП, где ОХС - общий холестерин, а ХС ЛПВП - холестерин липопротеинов высокой плотности. При этом больные с нарушенным липидным обменом были распределены по типу ДЛП по классификации, предложенной D. Fredricson. IIa тип ДЛП регистрировали, если в сыворотке крови значения содержания ХС ЛПНП превышали 175 мг/дл при нормальных величинах концентрации ТГ, IIб тип - если было повышено содержание ХС ЛПНП и ТГ (свыше 175 мг/дл для лиц моложе 40 лет и свыше 210 мг/дл для пациентов 40 лет и старше), IV тип - если значения ХС ЛПНП были в пределах нормы, а концентрация ТГ была повышенной.
Мембраны эритроцитов выделяли путем гипоосмотического гемолиза [Dodge J.T. et al. 1963]. В полученной взвеси мембран определяли микробиуретовым методом содержание белка.
Липиды мембран эритроцитов экстрагировали хлороформ-метаноловой смесью по методу J. Folch et al. [1957]. Общее содержание липидов в мембране эритроцитов определяли методом Н.А. Тарановой [1987]. Препаративное разделение общих липидов проводили методом тонкослойной хроматографии [Финдлей Дж.Б., Эванз У.Г., 1990] в системе растворителей гептан: диэтиловый эфир: этилацетат (в соотношении 80:20:1,5) на пластинках “Sorbfil” (Россия). Разделение фракций фосфолипидов мембран эритроцитов методом тонкослойной хроматографии [Прохорова М.И., 1982] осуществляли в системе хлороформ : метанол : вода (в соотношении 32:12,5:2) на пластинках “Sorbfil”(Россия). Идентификацию фракций липидов осуществляли с использованием соответствующих стандартов (фирма “Sigma”, США). Количественную оценку хроматограмм проводили с помощью разработанной компьютерной программы.
Характеристика структурных свойств липидной фазы мембран эритроцитов проводилась с использованием измерения собственной флуоресценции теней эритроцитов и определения спектральных характеристик взаимодействия мембран с флуоресцентным зондом пирен на спектрофлуориметре “Hitachi-MPF-4” (Япония). Микровязкостные свойства мембраны в области анулярных и общих липидов оценивали по степени эксимеризации пирена, вычисляя отношение интенсивности флуоресценции эксимеров и мономеров (J470/J370) при длине волны возбуждающего света (в) 285 и 340 нм, соответственно. Полярность окружения молекул пирена оценивали по отношению J370/J390 при в=340 нм [Добрецов Г.Е., 1989]. Рассчитывали показатель миграции энергии с триптофановых остатков на пирен по формуле, предложенной Ю.А. Владимировым и Г.Е. Добрецовым [1980].
Определение активности Na+,K+-АТФазы в мембранах эритроцитов определяли методом, разработанным А.М. Казенновым и соавт. [1984] и основанном на накоплении неорганического фосфора (Рi) в среде, содержащей АТФ, в результате его гидролиза под действием АТФазы. Содержание Рi определяли по методу Р.S. Chen et al. [1956].
В рамках диссертационной работы был выполнен экспериментальный блок, связанный с исследованием структурной организации эритроцитарных мембран у крыс в условиях инкубации взвеси теней эритроцитов с липопротеинами основных классов (ЛПНП, ЛПОНП, ЛПВП), а также их апобелками (аполипопротеинами А-I, С и Е) in vitro. Липопротеины выделяли из сыворотки крови крыс с помощью изоплотностного ультрацентрифугирования в растворе KBr [Hatch F.T., Lees R.S., 1968]. Для получения аполипопротеинов проводили делипидирование липопротеинов охлажденной смесью хлороформ-метанол (2:1) с последующей многократной отмывкой эфиром. Фракции, содержащие аполипопротен A-I, С и Е, очищали с помощью ионообменной хроматографии с использованием ионообменника «DEAE-Toyopeare 650 М-TSK» (Япония) [Laemli U.K., 1970]. Инкубацию теней эритроцитов с липопротеинами и их апобелками проводили при 37°С в течение 20 мин с последующим однократным отмыванием и исследованием структурных свойств мембран эритроцитов с помощью флуоресцентного зонда пирен. Параллельно каждой опытной пробе ставилась контрольная проба, содержавшая тени эритроцитов того же животного с инкубационной средой (10 мМ трис-HCl буфер, рН 7.4).
Полученные в ходе исследования данные обрабатывали с использованием методов статистического анализа. Проверка на нормальность распределения была осуществлена с помощью критерия Колмогорова-Смирнова. Для проверки гипотезы о значимости различий законов распределения исследуемых признаков для отдельных групп пациентов был применен критерий Манна-Уитни (U-тест) для несвязанных выборок, для обработки результатов экспериментальных данных - критерий Вилкоксона для попарносвязанных выборок. Для выявления функциональных взаимосвязей между группами изученных параметров использовали вычисление коэффициента ранговой корреляции Спирмена. Распределение общей группы больных по категориям было осуществлено с помощью кластерного анализа методом К-средних.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
На сегодняшний день имеется немало данных, свидетельствующих о том, что зрелые эритроциты обновляют свой липидный состав благодаря взаимодействию с ЛПВП, ЛПНП и ЛПОНП [Quarford S.H., 1970; Faergeman O., Havel R.J., 1975; Poon R., 1981; Hollan S. et al., 1995, 1996; Broncel M. et al., 2005]. Подтверждением наличия обменных процессов между плазменными липопротеинами и мембраной эритроцитов является и установление факта дезорганизации липидного бислоя красных кровяных клеток у больных с дислипопротеинемиями.
Многочисленные данные литературы говорят о широкой распространенности нарушений липидного обмена у больных сахарным диабета как типа 1, так и типа 2, связанных прежде всего с нарушением гормональной регуляции метаболических процессов [Manzato E. et al., 1989; Hanefeld M., 1994; Деменкова, 2001; Яфасов К.М., Дубянская Н.В., 2001; Потеряева О.Н. и соавт., 2003; Vergиs B., 2005; Lapolla A. et al., 2006]. Согласно данным наших исследований, у больных СД 1 липопротеиновый спектр сыворотки крови характеризовался повышением концентрации общего ХС, изменением субфракционного состава ЛПВП и повышением индекса атерогенности. При этом выраженность метаболических нарушений у пациентов с СД 1 зависела от длительности диабета, стадии компенсации углеводного обмена и наличия сосудистых осложнений: было отмечено выраженное повышение содержания общего ХС у пациентов с течением заболевания более 5 лет или с сосудистыми осложнениями II и III стадии (рис. 1.). Пациенты с СД 2 характеризовались более выраженными и разнообразными отклонениями показателей липидного обмена: повышение содержания общего холестерина и триацилглицеридов в сыворотке крови наряду со снижением концентрации ХС ЛПВП (табл. 2).
Механизмы развития гиперхолестеринемии, как было указано выше, при сахарном диабете связаны с нарушением гормональной регуляции. При этом инсулярная недостаточность проявляется не только в нарушении углеводного и жирового обмена, но и активацией контринсулярных гормонов. Гипертриглицеридемия сопряжена с повышением содержания ЛПОНП. У пациентов, страдающих СД типа 2, в сыворотке крови было обнаружено увеличение концентрации всех подфракций ЛПОНП (табл. 2). Так, содержание ЛПОНП1 у больных СД 2 превышало соответствующий показатель у здоровых доноров в 1,8 раз (р<0,01), а концентрация ЛПОНП2 был выше в 2,2 раза (р<0,001) (табл. 2).
Как полагают исследователи, повышение образования ЛПОНП в печени происходит благодаря увеличенному поступлению жирных кислот [Cummings M.H., 1995], а также отсутствию ингибирующего влияния инсулина на продукцию и формирование ЛПОНП [Reaven G.M., 1981; Tobey T.A., 1981; Malmstrцm R., 1997]. Кроме того, обсуждается возможность увеличения синтеза жирных кислот в печени de novo [Shimomura I., 2000; Tobe K., 2001].
Таблица 2
Результаты исследования липопротеинового спектра сыворотки крови у больных сахарным диабетом типа 1 и 2, Me(Q1-Q3)
|
Показатель |
Здоровые доноры |
Больные сахарным диабетом типа 1 |
Больные сахарным диабетом типа 2 |
|
|
ЛПВП, мг/дл |
292,98 (246,29-334,75) |
236,89 (183,22-305,14) p1>0,05 |
295,17 (234,25-358,76) p1>0,05; p2>0,05 |
|
|
ЛПВП3, мг/дл |
130,68 (62,06-182,31) |
91,73 (64,41-135,47) p1>0,05 |
126,94 (98,30-225,12) p1>0,05; p2<0,05 |
|
|
ЛПВП2, мг/дл |
161,86 (123,54-203,81) |
111,46 (56,48-148,00) p1<0,05 |
115,85 (51,56-167,08) p1<0,05; p2>0,05 |
|
|
ЛПНП, мг/дл |
457,06 (356,93-513,69) |
435,71 (324,62-612,80) p1>0,05 |
533,31 (428,62-586,60) p1>0,05; p2>0,05 |
|
|
ЛПНП2-3, мг/дл |
246,66 (200,16-290,94) |
316,76 (210,41-411,35) p1<0,05 |
328,55 (264,78-364,41) p1<0,05; p2>0,05 |
|
|
ЛППП, мг/дл |
214,20 (144,77-241,75) |
189,97 (84,98-192,82) p1>0,05 |
197,51 (98,41-267,76) p1>0,05; p2>0,05 |
|
|
ЛПОНП, мг/дл |
53,47 (42,24-115,01) |
53,45 (22,62-100,16) p1>0,05 |
124,85 (67,79-246,87) p1<0,01; p2<0,01 |
|
|
ЛПОНП2, мг/дл |
44,39 (26,59-97,23) |
47,94 (15,99-84,55) p1>0,05 |
96,02 (57,09-200,86) p1<0,05; p2<0,001 |
|
|
ЛПОНП1, мг/дл |
15,20 (9,56-22,44) |
13,35 (6,62-25,50) p1>0,05 |
27,43 (18,35-36,78) p1<0,05; p2<0,01 |
|
|
Общий холестерин, мг/дл |
169,63 (153,95-190,51) |
258,06 (193,05-306,42) p1<0,05 |
303,80 (264,89-353,31) p1<0,001; p2<0,01 |
|
|
Общие триглицериды, мг/дл |
150,39 (128,69-170,16) |
119,38 (70,90-188,48) p1>0,05 |
213,67 (166,51-247,55) p1<0,001; p2<0,01 |
|
|
ХС/ФЛ |
0,911 (0,882-0,957) |
0,960 (0,941-1,027) p1<0,01 |
0,960 (0,923-1,008) p1<0,01; p2>0,05 |
|
|
ХС ЛПВП, мг/дл |
57,87 (48,48-61,73) |
43,91 (29,26-56,81) p1<0,05 |
48,13 (38,68-59,59) p1<0,05; p2>0,05 |
|
|
Индекс атерогенности |
1,92 (1,81-2,04) |
4,87 (3,39-6,29) p1<0,01 |
5,37 (3,99-7,61) p1<0,01; p2>0,05 |
|
|
апоЛПВП, мг/дл |
143,83 (129,55-179,94) |
111,15 (92,15-168,25) p1>0,05 |
150,46 (131,57-204,20) p1>0,05; p2<0,05 |
|
|
апоЛПНП, мг/дл |
77,53 (63,85-96,62) |
88,96 (64,14-105,94) p1>0,05 |
96,42 (77,44-106,97) p1>0,05; p2>0,05 |
|
|
апоЛПОНП, мг/дл |
5,51 (3,47-12,37) |
3,82 (1,85-10,26) p1>0,05 |
12,17 (6,49-26,95) p1<0,05; p2<0,01 |