Материал: Донсков С.И., Мороков В.А. Группы крови человека. Руководство по иммуносерологии

в комбинации с полиэтиленгликолем и раствором низкой ионной силы, прямая проба Кумбса в гелевой модификации, твердофазный и ферментный методы. Наилучший эффект дает комбинация двух методов.

Профилактика ОГР

Для предупреждения ОГР, по заключению специалистов, требуются следующие меры:

––установление групп крови АВО, Rh(D), Rh- и K-фенотипа для всех реципиентов и трансфузий донорской крови, по возможности идентичного фенотипа;

––автоматизированный скрининг антител перед трансфузией с использованием непрямого антиглобулинового теста с раствором низкой ионной силы в микроколонках с панелью из трех образцов стандартных эритроцитов; скрининг проводят перед каждой трансфузией, и его результаты считают действительными в течение 3 дней;

––назначениеидентичной(помаксимальномучислуантигенов)кровивсемпациентамсантителамиитем,укоговпрошломобнаруживалисьантитела;

––проба на совместимость с каждым образцом донорских эритроцитов в микроколонках с раствором низкой ионной силы;

––регистрация носителей антител в автоматизированной информационной системе с уведомлением обо всех положительных результатах и пациента, и его лечащего врача;

––скрининг антител у женщин через 4–6 мес. после родов.

––национальная информационная база данных об антителах, выявленных в разных лабораториях.

Список литературы

1.Донсков С.И. Комментарий к статье В.Г. Никогосова и Т.В. Фадеевой «Случай переливания большого количества иногруппной эритроцитной массы и плазмы, окончившийся благополучным исходом» // Информационный бюллетень «Новое в трансфузиологии» – 1994. – Вып. 5. – С. 65–66.

2.Донсков С.И. О происхождении антиэритроцитарных антител // Актуальные вопросы трансфузиологии и клинической медицины: материалы конференции. – Киров, 2010. – С. 140–141.

3.Донсков С.И., Порешина Л.П., Липатова И.С., Червяков В.И., Зотиков Е.А.

Выявление противоэритроцитарных антител у лиц, не имевших антигенной стимуляции //Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии: материалы научно-практической конференции. – СПб., 6–8 июня 2000. – С. 242–243.

4.Липатова И.С. Аллоиммунизация групповыми антигенами эритроцитов (индивидуальные и популяционные особенности): автореф. дис. … канд. мед. наук. –

М., 2009. – 26 с.

971

5.Никогосов В.Г., Фадеева Т.В. Случай переливания большого количества иногруппной эритроцитной массы и плазмы, окончившийся благополучным исходом // Информационный бюллетень «Новое в трансфузиологии». – 1994. –

Вып. 5. – С. 63–64.

6.Умнова М.А. Изоиммунные свойства крови человека и их значение в клинической практике: автореф. дис. … докт. мед. наук. – М., 1967. – 52 с.

7.Умнова М.А. Изосерологические системы крови человека и их значение в трансфузиологии // Групповые системы крови и гемотрансфузионные осложнения / под ред. М.А. Умновой. – М.: Медицина, 1989. – С. 5–30.

8.Combs M.R., Arney R.S., Bennett D.S., Telen N.J. Delayed serological transfusion reactions and the gel test:Afive year experience // Transfusion. – 2005. – 45(Suppl 3S). –

P.123A.

9.Combs M.R., Arney R.S., Telen N.J. Comparison of gel and polyethylene glycol for the detection of alloantibodies associated with delayed serological transfusion reactions // Transfusion. – 2005. – 45(Suppl 3S). – P. 138A.

10.Haemovigilance: International Forum // Vox Sang. – 2006. – V. 90. – P. 207–241.

11.Prevention and diagnosis of delayed haemolytic transfusion reactions: International Forum

//Vox Sang. – 2006. – V. 91. – P. 353–368.

12.Issitt P.D., Combs M.R., Booth K. Comparison of MTS-gel and polyethylene glycol (PEG) IAT methods // Transfusion. – 1997. –V. 37 (Suppl. 64S).

13.Issitt P.D., Combs M.R., Bradshaw T. Comparison of a solid phase and polyethylene glycol (PEG)IATmethodinalargetransfusionservice//Transfusion.–1997.–V.37(Suppl.9S).–

P.28S.

14.Kim H.H., Park T.S., Oh S.H. et al. Delayed hemolytic transfusion reaction due to antiFy b caused by a primary immune response: a case study and a review of the literature // Immunohematology. – 2004. – V. 20. – P. 184–186.

15.Knowles S.M., Milkins C.E., Chapman J.F., Scott M. The United Kingdom National External Quality Assessment Scheme (Blood Transfusjon Laboratory Practice): trends in proficiency and practice between 1985 and 2000 // Transfus. Med. – 2002. – V. 12. –

P.11–23.

16.Michalewska B. Is autocontrol necessary in pretransfusion testing? //Acta Haematol. Pol. – 2002. – V. 33. – P. 205–212.

17.Michlig C., V. D.H., Wasserfallen J.B. et al. Three years of haemovigilance in a general university hospital // Transfus. Med. – 2003. – V. 13. – P. 63–72.

18.Redman M., Regan F., Contreras M. A prospective study of the incidence of red cell alloimmunisation following transfusion // Vox Sang. – 1996. – V. 71. – P. 216 – 220.

19.Schonewille H., Brand A. Alloimmunization to red cell antigens after universal leucodepletion. A regional multicentre retrospective study // Brit. J. Haemat. – 2005. –

V.129. – P. 151–156.

20.SchonewilleH.,HansL.H.,vanZijlA.M.RBSantibodypersistence//Transfusion.–2000.–

V.40. – P. 1127–1131.

972

21.Schonewille H., van de Watering M.G., Loomans S.G., Brand A. Red blood cell alloantibodies after transfusion: factors influencing incidence and specificity // Transfusion. – 2006. – V. 46. – P.250–256.

22.SiegenthalerM.A.,SchneiderP.,V.D.H.,TissotJ.D.Haemovigilanceinageneraluniversity hospital: need for a more comprehensive classification and a codification of transfusionrelated events // Vox Sang. – 2005. – V. 88. – P. 22–30.

23.WalewskaI.,SeyfriedH.,MichalewskaB.,CzemobielskaW.Delayedhaemolytictransfusion reactions – DHTR //Acta Haemat. Pol. – 1987. – V. 18. – P. 149–159.

24.Zeiler T., Thiele S., Kretschmer V. Festphasentechnik versus Gelzentrifugation zum Nachweis erythrozytärer Antikörper – eine prospective Studie zum Vergleich zweier Antikörpersuchtests:SibrowskiW.etal.Transfusionsmedizin1995 / 96//BeitrInfusionsther Transfusionsmed. – Basel: Karger., 1996. – V. 33. – P. 17–21.

973

Глава 36.

Система обеспечения иммунологической безопасности переливания эритроцитов

Система обеспечения иммунологической безопасности переливания эритроцитов имеет две составляющие – производственную и клиническую иммуносерологию. Структура производственной иммуносерологии пред­ставлена профильными лабораториями и техническими группами коммерческих организаций, станций и отделений переливания крови и контролирующими организациями Министерства здравоохранения и социального развития РФ. Их функция – производство и контроль качества иммуносерологических реактивов. Клиническая иммуносерология представляет собой сферу приме­нения иммуносерологических реактивов для определения группы крови, резус­ -фактора и других антигенов эритроцитов, проведения проб на индивидуальную­ совместимость крови донора и реципиента непосредственно в клинике­ .

Ошибки, обусловленные некачественными тестовыми реактивами, при существующей системе производства практически исключены. Источником ошибок является сфера клинической иммуносерологии. До недавнего времени переливание кровиотносиликпростымпроцедурам,которыеможетвыполнятьлюбойврач.Од­ нако, как показала практика, у врача, переливающего кровь от случая к случаю­ , не закрепляютсянеобходимыедлятрансфузиологаииммуносерологапрофессиональныенавыки.Всвязисэтимпервыйпринципобеспечениябезопасности­ гемотрансфузии: иммуносерологические исследования и переливание эритроцитов должны выполнятьпрофессиональноподготовленныеспециалисты.

Ошибки при определении групп крови

Воизбежаниеошибокприопределениигрупповой-ирезус-принадлежностикро- ви необходимо четко знать их источники. Ошибки возникают при нарушении техникивыполненияисследованияивслучаяхтрудноопределяемыхгруппкрови[7].

Технические ошибки:

1.Порядок расположения реагентов.

2.Соотношение ингредиентов реакции.

3.Температурные условия.

4.Продолжительность наблюдения.

5.Выпадение фибрина.

6.Агглютинация, маскированная гемолизом.

7.Неправильная запись.

974

Ошибки, обусловленные биологическими особенностями исследуемой крови (трудноопределяемые группы крови):

1.Подгруппы крови.

2.Неспецифическая агглютинация.

3.Агглютинация, обусловленная другими антителами.

4.Особенности групп крови новорожденных.

5.Кровяные химеры.

6.Другие особенности.

Технические ошибки

Порядок расположения реагентов. Если нарушен порядок расположения реагентов в штативе или на пластинке, то при правильной оценке результата с каждой отдельно взятой сывороткой можно сделать неправильное заключение о групповой и резус-принадлежности исследуемой крови. Поэтому каждый раз при определении группы крови следует проверить расположение реагентов, а также визуально оценить их качество, исключив использование помутневших, подсохших реагентов и с истекшим сроком годности.

Соотношение ингредиентов реакции. Оптимальное для реакции агглютина-

ции соотношение эритроцитов и тестовых реагентов 1 : 10 при использовании гемагглютинирующих сывороток и 2–3 : 10 при использовании моноклональных реагентов и реагентов, приготовленных в комбинации с коллоидами.

Как при избытке, так и при недостаточном количестве эритроцитов агглютинация появляется медленно и может быть не замечена, особенно в тех случаях, когда агглютинационные свойства эритроцитов снижены (подгруппа А2, эритроциты D u).

Температурные условия. Определение группы крови производят при температуре не ниже 15  оС, поскольку исследуемая кровь может содержать поливалентные холодовые агглютинины, вызывающие неспецифическое склеивание эритроцитов при пониженной температуре (холодовая агглютинация).

При повышенной температуре (более 25  оС) антитела анти-А, анти-В и антиАВ реагируют менее активно, чем при комнатной температуре (22  оС), поэтому определение группы крови производят при температуре не выше 25  оС. Нарушение температурных условий при определении группы крови может привести к искажению результатов.

Продолжительность наблюдения. Агглютинация эритроцитов появляется в течение 10–30 сек., однако наблюдение за ходом реакции следует проводить не менее 5 мин, внимательно следят за теми каплями, в которых агглютинация не появилась. Это позволяет выявить слабые агглютиногены А2 и D u, характеризующиеся замедленной агглютинацией. Длительное выдерживание проб на пластинке приводит к их подсыханию и появлению в зоне подсыхания агрегатов эритроцитов, вследствие чего создается ошибочное впечатление положительной реакции. В сомнительных случаях исследование повторяют.

975