Материал: Сбор, выделение и идентификация половых феромонов насекомых

2.9 Капровый жук Trogoderma granarium Everts

Рисунок 11. Капровый жук Trogoderma granarium Everts

Родина капрового жука - Индия, он является типичным вредителем запасов сельхозпродукции. Развивается в диапазоне температур от 15-46 С, оптимальная температура развития капрового жука 32-36 оС, при этих условиях развитие одного поколения длится 26-35 дней. Температура выше 46 С вызывает миграцию личинок в поисках менее нагретых мест. Такое явление наблюдается при самосогревании зерна и в помещениях солодовен пивоваренных заводов. Весной, напротив, личинки выползают из прохладного субстрата на теплые прогреваемые стены. Самки после спаривания откладывают яйца на пищевой субстрат. Средняя плодовитость самки 65, максимальная - 126 яиц. Жуки не летают, поэтому расселяются активно только в пределах помещения или предприятия. Экономические затраты на ликвидацию двух очагов капрового жука в Ставропольском крае в 1987-89 гг., по данным Росгоскарантина, составили 6 млн руб. Все страны мира при первом же случае обнаружения очагов капрового жука принимают экстренные меры по уничтожению этого опасного карантинного вредителя, не допуская экономических потерь. Установлено также, что при заносе капрового жука на территорию РФ прогностические прямые потери вследствие выбраковки и уничтожения товарной продукции составят от 167,13 млн руб./год (наиболее «мягкая» ситуация) до 5726,0 млн руб./год. Существующие методы карантинного досмотра грузов на пограничных пунктах ввоза не позволяют в 100% случаев выявить зараженность зернопродуктов в слабой степени. Особенно трудно выявить зараженность пивоваренного солода, фуражной кукурузы и дробленых зернопродуктов (типа шротов, жмыха), в фазе яйца или личинок младших возрастов. Проникая таким образом через границы, капровый жук заражает зернохранилища, транспортные средства, склады сырья и муки, мельницы, комбикормовые заводы, кондитерские фабрики, солодохранилища и дробильные цеха пивоваренных заводов. Обследование складов предприятий, получающих, хранящих и перерабатывающих импортную растительную продукцию и другие товары повышенного риска завоза вредителей запасов карантинного значения, - задача первостепенной важности для работников фитосанитарной службы. Задача выявления слабой степени зараженности продукции капровым жуком в период хранения или пустых складов и предприятий, перерабатывающих импортную продукцию, облегчается благодаря использованию синтетических половых феромонов. Отечественный феромон обладает высокой аттрактивностью для самцов капрового жука. За недельный период на ловушку привлекается около 100% 3-5-дневных самцов. Обследование складов можно проводить с весны до глубокой осени. Для мониторинга ежегодно потребуется 7894 ловушки (табл. 3.16). Ловушки размещают в складских помещениях в местах складирования импортных подкарантинных грузов при температуре не ниже 20 оС на стене, у проемов входных дверей, стыков бетонных и деревянных конструкций, около или на хранящейся продукции из расчета 1 ловушка на 25 м2 площади 43 склада. Учет и выборку насекомых следует проводить не реже одного раза в неделю. Выборки из ловушек (насекомые на листах фильтровальной бумаги), клеевые вкладыши (в фильтровальной бумаге по отдельности) в установленном порядке отправляются для экспертизы в лабораторию.

.10 Вредители закрытого грунта

Площадь закрытого грунта (зимние теплицы под стеклом) на территории РФ составляет около 2000 га. В закрытом грунте на территории РФ могут иметь значение следующие карантинные организмы, для которых разработаны методы выявления с помощью ловушек: южноамериканский листовой минер Liriomyza huidobrensis, томатный листовой минер Liriomyza sativae, табачная белокрылка Bemisia tabaci, западный цветочный, или 47 калифорнийский трипс Frankliniella occidentalis, азиатская хлопковая совка Spodoptera litura, Spodoptera littoralis, повреждающие практически весь ассортимент овощных, зеленных и цветочно-декоративных растений, культивируемых в теплицах. В тепличных условиях практически все вредители, в том числе и карантинные, при непрерывном цикле производства имеют от 8 до 12 генераций в год. При этом у них формируется устойчивость к комплексу химических средств борьбы, что приводит к резкому снижению эффективности защитных мероприятий. Вредоносность карантинных видов в закрытом грунте составляет от 30 до 100% и по прогностическим расчетам материальные убытки закрытому грунту на территории РФ оцениваются в 20 млрд руб. в год. Своевременное выявление очагов карантинных вредителей в теплицах позволит применить комплекс высокоэффективных мер (локальная ликвидация вредителя вместе с растениями-хозяевами, обеззараживание, промораживание, огневая обработка и т.п.) с минимальным ущербом. Цветные клеевые ловушки применяются для отлова в закрытом и открытом грунте: табачной белокрылки, западного цветочного трипса, томатного и южноамериканского листовых минеров и др.

В закрытом грунте ловушки развешивают над растениями, на внутритепличных конструкциях - 1 ловушка на 100 м2 , в плодовых насаждениях и приусадебных участках ловушки развешивают на высоте 1,5-2 м от уровня почвы при дневной температуре 20 С, 1 ловушка на 0,5 га. Продолжительность обследования 20 суток. Для выявления вредителей закрытого грунта ежегодно потребуется 82649 цветных ловушек. Учет насекомых с заменой цветной ловушки следует проводить не реже одного раза в 10 дней.

Рисунок 12. Метод дезориентации на виноградниках против гроздевой листовертки.

3. Разнообразие феромонов

Различают два основных типа феромонов: релизеры, запускающие определенную поведенческую реакцию, и праймеры, которые меняют физиологическое состояние особи и модифицируют ее развитие. Релизеры обычно представлены высоколетучими веществами, распространяющимися по воздуху, в то время как праймеры часто передаются контактным путем. Среди релизеров, которые изучены лучше праймеров, различают несколько подтипов. Таковы аттрактанты - призывающие особей вещества (половые феромоны и феромоны агрегации), репелленты - отпугивающие, аррестанты - останавливающие, стимулянты - вызывающие активность (например, феромоны тревоги), детерренты - тормозящие реакцию. Некоторые стимулянты (афродизиаки) представляют собой вещества полового возбуждения, вызывающие брачное поведение. Агрегационные феромоны стимулируют скопление насекомых, следовые феромоны предназначены для разметки территории и направляют движение особей. Обычно феромоны представляют собой не одно вещество, а смесь основного, преобладающего по массе компонента с малыми добавками (минорными компонентами). Одно вещество может иметь несколько разных функций. Характерный пример - "царское вещество" медоносных пчел (рис. 1, и), выделяемое железами верхних челюстей пчелиной матки. Этот феромон привлекает как самцов, так и рабочих пчел к матке, выступая как релизер. Праймерное действие проявляется в подавлении развития яичников у рабочих пчел (все они самки) и блокировании рефлекса, определяющего постройку маточных ячеек. Облизывая самку и передавая феромон с пищей, рабочие пчелы распространяют в гнезде информацию о состоянии пчелиной семьи. Самцы же реагируют на "царское вещество" только во время их короткого брачного полета. Помимо основного компонента в состав "царского вещества" входят и другие вещества, порознь неактивные, но резко усиливающие действие основного компонента в смеси. Химическая структура феромонов гораздо более разнообразна по сравнению с их функциональными типами. Для релизеров характерны высокая летучесть и относительная простота синтеза в организме: насекомое порой вынуждено выделять феромон в течение долгого времени, ожидая реакции партнера. Феромоны нередко используются для видового опознавания и в связи с этой функцией должны быть специфичными для каждого из видов. Наиболее успешно развиваются исследования половых феромонов, где определены компоненты феромонных смесей у сотен видов, в основном у сельскохозяйственных и лесных вредителей. Большинство из расшифрованных к настоящему времени феромонов относятся к спиртам и их ацетатам, а также к альдегидам и кетонам. Казалось бы, столь скромный набор веществ предоставляет ограниченные возможности для варьирования запахов, однако имеются специальные механизмы для поддержания видовой специфичности феромонных смесей. Насекомые широко используют явление химической изомерии: структурной и оптической.

Рисунок 13. Клеевые феромонные ловушки используют для мониторинга вредителей в плодовом саду.

Рисунок 14. Ловушки для короедов вывешивают в конце апреля

.1 Половые феромоны и вещества агрегации

Место синтеза и выделения феромонов необязательно приурочено к определенным железам, как у ручейников и чешуекрылых. Нередко компоненты феромонной смеси синтезируются в клетках жирового тела, заполняющего промежутки между внутренними органами, далее растворяются в гемолимфе (крови насекомых) и выводятся через покровы, как у пилильщиков. Наконец, у тараканов-прусаков Blatella germanica афродизиак 3,11-диметил-нонакозан-2-он содержится в восковом покрове на поверхности тела самки. Это вещество вызывает у самца таракана, прикоснувшегося усиками к самке, половое возбуждение и характерные позы с поднятыми крыльями, предшествующие спариванию. В большинстве случаев, однако, испаряющиеся феромоны диффундируют в воздухе и действуют на значительных расстояниях. Для ответной реакции самцов достаточно наличия очень небольшого количества феромона в воздухе. Например, предельная действующая концентрация бомбикола в воздухе составляет всего 10-12 мкг/мл, а для возбуждения чувствительной рецепторной клетки на антенне достаточно всего одной молекулы. В чувствительных органах - хеморецепторных сенсиллах - при этом достигается предельный порог чувствительности. Рецепторы насекомых, таким образом, могут считать отдельные молекулы. В одной сенсилле, имеющей вид волоска или бугорка на поверхности усика, порой скрываются разные рецепторные нейроны, каждый из которых настроен на определенный тип химического вещества. Еще недавно считали, что есть нейроны-специалисты, реагирующие только на один тип молекул, и генералисты, предназначенные для восприятия широкого круга веществ за счет потери чувствительности. Исследования последнего времени выявили специализацию и тех нейронов, которые ранее относили к генералистам: оказалось, что при всей избирательности рецепторные клетки могут ошибочно реагировать на родственные молекулы, но с меньшей интенсивностью. После взаимодействия молекулы феромона с рецепторными белками в чувствительных клетках-нейронах происходит цепь реакций. Рецепторный протеин взаимодействует с так называемым G-протеином, а тот, в свою очередь, активизирует фосфолипазу. В клетке выделяется инозитол-3-фосфат и открываются кальциевые каналы; поступающие внутрь нейрона ионы кальция активизируют кальцийзависимую протеинкиназу, которая при помощи фосфорилированных посредников активизирует белки натриевых и калиевых ионных каналов. Каналы открываются, формируются ионные потоки, меняется заряд клеточной мембраны, возникает рецепторный потенциал. Распространяясь по телу нейрона, рецепторный потенциал вызывает гораздо более интенсивный ответ в форме потенциала действия, распространяющегося по возбужденному нервному волокну. По нервам возбуждение рецепторов антенн передается в "головной мозг" насекомого - надглоточный ганглий. Там в дейтоцеребруме (втором сегментарном ганглии мозга) находятся высшие отделы обонятельного анализатора, где обрабатывается вся приходящая ольфакторная (обонятельная) информация. Почувствовав запах, самцы движутся против ветра в направлении источника феромонного сигнала, причем обычно насекомое совершает зигзаги, оценивая направление на самку. Насекомое ориентируется на ветер и возрастающую концентрацию феромона в воздухе. Ранее полагали, что количество феромона монотонно убывает по направлению от источника. Лишь в последнее время была выявлена сложная структура феромонных струй, возникающих в воздухе под действием турбулентности. Сложные вихри феромонной струи затрудняют поиск и обнаружение источника феромона, вынуждая самца проводить много времени в поисках самки. Особую проблему представляет обнаружение особей в условиях высоких численностей, когда множество призывающих самок вызывает перекрывание феромонных облаков и как результат - резкое снижение градиентов концентрации феромонов. Вероятно, в таких случаях насекомые могут использовать минорные компоненты феромонов в качестве ориентиров для поиска и опознавания самки. Некоторые виды насекомых имеют очень сложную систему взаимодействия между полами, включающую разные типы стимулов. Так, у некоторых бабочек-медведиц (Arctiidae) самец подлетает к самке с вывернутыми пахучими железами, ориентируясь на запах ее феромона. Почувствовав химические сигналы самца, самка реагирует взмахами крыльев и звуковыми сигналами. У вощинной огневки Galleria mellonella самцы и самки обмениваются ультразвуковыми сигналами-щелчками. Услышав звуки самки, самец выделяет феромон для ее точной наводки. А вот у некоторых бабочек-тонкопрядов (Hepialidae) самка привлекается к летающим в воздухе самцам, после чего оба насекомых падают на землю, и уже далее самец находит самку по ее запаху. Очень сложные коммуникационные системы выявлены у некоторых видов ручейников, где в дополнение к многокомпонентным феромонам, которыми обладают оба пола, имеются разнообразные вибрационные сигналы. Особый тип феромонов - вещества агрегации. При роении и других видах агрегации вместе собираются особи одного пола, повинуясь как химическим, так и другим стимулам: визуальным, акустическим и т.п. При агрегации (роении) ручейников в воздухе ведущая роль принадлежит самцам, к которым прилетают самки. По богатству феромонных смесей у роящихся ручейников-гидропсихид самцы, имеющие до четырех активных компонентов в феромонной смеси, значительно опережают самок с единственным ольфакторно активным компонентом. Феромоны самок при этом выделяются в меньшем количестве, чем у самцов, а порой и вовсе отсутствуют. Жуки-короеды особенно широко используют агрегационное поведение. Ведь для успешной атаки на дерево необходимо массовое заселение, способное ослабить растение-хозяина и дать возможность потомству развиваться при пониженном стволовом давлении. В противном случае огромные количества выделяющейся смолы залепляют ходы и убивают личинок. Короеды обычно используют смесь нескольких веществ-синергистов, взаимно усиливающих свое действие. Все они родственны пахучим веществам смолы и относятся к группе терпенов и терпеноидов (см. рис. 1, з). Показано, что у отдельных видов короедов феромоны образуются в кишечнике из съеденной смолы хвойных под воздействием бактерий. Так, палочки Bacillus cereus в кишечнике жуков Ips paraconfusus превращают a-пинен в вербенол. У примитивных короедов первыми на атакуемое дерево прилетают самки, а потом их находят самцы. У высших представителей данной группы, наоборот, гнезда закладывают самцы и ожидают самок. В обоих случаях первоначальное заселение дерева происходит одним из полов и представляет собой типичную агрегацию.

феромон насекомое вредитель

3.2 Вещества тревоги и пропаганды

У многих насекомых, образующих семьи или скопления (термитов, тлей, клопов, муравьев, ос, пчел), имеются особые химические вещества, предназначенные для оповещения членов группы об опасности. Феромоны тревоги выделяются в воздух теми насекомыми, которые первыми заметили опасность. После превышения пороговой концентрации другие особи, получившие феромонный сигнал, в свою очередь, выделяют эти же вещества. В итоге скопление рассеивается или же насекомые оказывают сопротивление агрессору. У муравьев имеется несколько источников феромонов тревоги. Дюфуровы железы в брюшке обычно синтезируют углеводороды и метилкетоны, в то время как верхнечелюстные (мандибулярные) железы выделяют цитраль, гераниаль (см. рис. 1, е) и другие терпеноиды. Цитраль наряду с кетонами нонан-2-оном и гептан-2-оном входит в состав феромонов тревоги пчел рода Trigona. Удивительно, что последние два из перечисленных веществ служат половыми феромонами некоторых ручейников. Рыжие лесные муравьи рода Formica обладают феромоном тревоги - муравьиной кислотой, которая одновременно служит оружием. У других муравьев в состав феромонов тревоги могут входить такие вещества, как декан, додекан (у муравьев-древоточцев рода Camponotus), диметилсульфид, ацетаты алифатических спиртов. Медоносные пчелы при ужалении вводят неприятелю смесь изоамилацетата, изоамилпропионата и изоамилбутирата вместе с ядом. Характерный запах, чем-то напоминающий аромат банана, призывает других пчел к врагу и вызывает агрессию, побуждая жалить отмеченную феромонами цель. Атака происходит и в том случае, если пчелу раздавить, что хорошо известно пчеловодам. В мандибулярных железах медоносных пчел содержится другой феромон тревоги - гептан-2-он (рис. 2, а). Феромон тревоги тлей - транс-b-фарнезен вызывает бегство насекомых с растения при атаке хищников. У красноклопов (семейство Pyrrhocoridae) аналогичную роль играет гексен-2-аль. Термиты имеют богатый набор феромонов тревоги из группы терпенов, таких, как терпинолен и a-пинен. Высокая концентрация веществ тревоги у некоторых насекомых вызывает не реакцию агрессии, а бегство. Сходство половых феромонов отдельных видов насекомых и феромонов тревоги агрессивных видов заставляет предполагать, что насекомые могут использовать имитаторы феромонов тревоги в целях защиты. Таким образом, используя феромонную мимикрию, насекомое может выдавать себя не за того, кем оно является на самом деле. Такие ложные феромонные сигналы получили название "вещества пропаганды". Феромонный миметизм широко проявляется некоторыми видами - социальными паразитами - для проникновения в колонии хозяев и откладки там своих яиц, например пчелами-кукушками. Удивительный пример представляют собой некоторые виды пауков, которые синтезируют половые феромоны бабочек для привлечения жертв. Сложными адаптациями для жизни в колониях муравьев и термитов обладают насекомые-мирмекофилы и термитофилы. У таких сожителей муравьев, как жуки-жужелицы Paussini, имеются особые эксудатории - группы желез на теле и антеннах. Муравьи постоянно слизывают выделения этих желез. Они кормят своих квартирантов так же, как и других членов колонии. Если такую жужелицу положить рядом с муравейником, то муравьи затаскивают ее внутрь, схватив за короткие и очень толстые антенны. Особые эксудатории развиваются на теле и многих других комменсалов, таких, как жуки-стафилины и мухи из семейства Phoridae. Все эти насекомые используют "вещества пропаганды" для успокоения и привлечения агрессивных хозяев гнезда. Кроме того, для обитания в колонии социальных насекомых на теле комменсала должны присутствовать определенные химические соединения, составляющие "паспорт" члена именно данной колонии. Состав этих соединений сильно варьирует и различен даже у колоний одного вида. При этом по запаху насекомое определяет, из какой колонии (своей или чужой) происходит встреченная особь и в соответствии с этим строит свое дальнейшее поведение. Такие химические паспорта служат пропуском внутрь гнезда. Однообразие химических меток достигается за счет трофаллаксиса - обмена пищей между членами колонии. Многие вещества используются насекомыми в качестве пахучих меток, служащих для привлечения и ориентации на местности. У шмелей в качестве таких следовых феромонов могут выступать выделения мандибулярных желез, такие, как транс-2,3-дигидрофарнезол и его ацетат, которые применяются для разметки территории и привлекают как самцов, так и самок. У пчел рода Trigona для этой же цели используются изомеры цитраля (нераль и гераниаль), а также гептан-2-ол. Среди муравьев и термитов для разметки территории и прокладки дорог в качестве указателей используются органические кислоты, спирты, терпены. Многие виды муравьев на бегу чертят концом брюшка по поверхности и оставляют пахучие метки, ориентированные определенным образом и медленно испаряющиеся на протяжении нескольких часов. Уничтожение участка размеченной таким образом дороги приводит к дезориентации муравьев, которые, однако, способны восстанавливать свои тропы. Следовые феромоны еще недостаточно изучены, их состав сложен, и биологическое действие неоднозначно.

Список литературы

1. Анализы фитосанитарного риска для территории РФ:

) Азиатская хлопковая совка Spodoptera litura, 2007 г.

2) Азиатский усач Anoplophora glabripennis, 2006 г.

3) Американская белая бабочка Hyphantria cunea, 2006 г.

) Восточная плодожорка Grapholitha molesta, 2006 г.

) Египетская хлопковая совка Spodoptera littoralis, 2007 г.

) Западный кукурузный жук Diabrotica virgifera virgifera, 2007 г.

) Калифорнийская щитовка Quadraspidiotus perniciosus, 2006 г.

8) Капровый жук Trogoderma granarium, 2006 г.

) Картофельная моль Phthorimaea operculella, 2006 г.

10) Минирующая муха Liriomyza sativae, 2007 г.

) Непарный шелкопряд Limantria dispar, 2007 г.

) Персиковая плодожорка Carposina niponensis, 2007 г.

) Сибирский шелкопряд Dendrolimus sibiricus, 2006 г.

) Средиземноморская плодовая муха Ceratitis capitata, 2006 г.

) Табачная белокрылка Bemisia tabaci, 2006 г.

) Томатная моль Tuta absoluta, 2010 г.

17) Трипсы Thrips palmi, Frankliniella occidentalis, 2007 г.

) Тутовая щитовка Pseudaulacaspis pentagona, 2007 г.

) Яблонная муха Rhagoletis pomonella, 2006 г.

2. Атанов Н.М., Комарова Г.Ф., Ганзина Н.В. Инструкция по выявлению, локализации и ликвидации очагов средиземноморской плодовой мухи, 1997.

. Буров В.Н., Сазонов А.П. Биологически активные вещества в защите растений. ВАСХНИЛ. Москва: ВО «Агропромиздат», 1987. С. 3-197. 4. Баранчиков Ю.Н. Мониторинг популяций сибирского коконопряда в рамках проекта USAID «Лесные ресурсы и технологии» (ФОРЕСТ).

. Баранчиков Ю.Н., Вендило Н.В. и др. Агропромышленный комплекс России в 2008 году. М., 2009. С. 111-150.

. Васютин А.С., Сметник А.И. Сборник инструктивных и методических материалов по карантину растений. Барнаул, 2000.

. Данкверт С.А., Маслов М.И., Магомедов У.Ш., Мордкович Я.Б. Вредные организмы, имеющие карантинное фитосанитарное значение для Российской Федерации. Справочник. Воронеж: Научная книга, 2009.

. Жимерикин В.Н. Методические рекомендации по выявлению и идентификации западного кукурузного жука. Отчет ФГУ «ВНИИКР», 2008.

. Кузина Н.П. Биологическая оценка синтетического феромона капрового жука. Тезисы докладов всесоюзного семинара. «Применение новых, химических и микробиологических препаратов в борьбе с карантинными вредителями, болезнями и сорными растениями». 1987. С. 81-83.

. Кузина Н.П. и др. Капровый жук - опасный карантинный вредитель.

. Кузина Н.П. Методические рекомендации по обследованию складских помещений на выявление капрового жука Trogoderma granarium Ev., 2009.

. Ковалев Б.Г., Кузин А.А., Атанов Н.М. Процедуру регистрации феромонов в России следует упростить. Ж. Защита и карантин растений. № 7, 2010. С. 8-9.

. Лебедева К.В. Вендило Н.В., Плетнев В.А., Пономарев В.Л. Феромоны карантинных вредителей и их применение. Агрохимия, 2004. № 12. С. 65-77.

. Мыттус Э.Р., Гранат Д.А. Применение феромонов для защиты растений (обзор), Таллин, 1983.99

. Отчеты о проведении научно-исследовательской и оперативно-методической работы (1986-1990 гг.) ВНИИКР, п. Быково.

. Петько В.М. Полевые испытания средств феромонного мониторинга сибирского коконопряда. Международная научная конференция. 19-20 ноября 2002 г. Тезисы докладов. М., 2002. С. 90.