Такая же картина наблюдалась и при культивировании в бульоне с цитратом аммония, но уже в присутствии щавелевокислого и хлористого аммония антимикробная активность становилась заметной. Лучшие результаты по активности супернатантов давали среды, содержащие тиомочевину, мочевину, глутамат нартия, тартрат и сульфат аммония. На клетках одновременно сорбировалось вещество с более значительным эффектом на грамположительные бактерии, и этому в большей мере способствовало культивирование штамма в присутствии мочевины и глутамата (табл.1). Дальнейшие исследования проводили в среде с тартратом, в присутствии которого результаты оказывались более стабильными. Простые моно - и дисахариды по способности влиять на синтез бактерицидного вещества были практически равнозначны (табл.2). Из числа спиртов глицерин превосходил 1-, 2-пропандиол и немного уступал сахаридам. Частично гидролизованный полисахарид декстрин по спектру и величине активности оказался лучше декстрана, крахмала, целлюлозы и ее производных. Несмотря на то что в присутствии салицина и пектина наблюдался хороший рост клеток, это не способствовало накоплению бактерицидного вещества. Напротив, альгинат, лигнин и поливинилпирролидон на фоне весьма умеренного роста культуры стимулировали синтез антимикробиента. Среды с фиколлом и хитозаном не дали положительных результатов.
При глубинном культивировании в среде с виннокислым аммонием и глюкозой первые признаки спорообразования c агрегацией клеток отмечаются после 48 ч роста, а к 72 ч уже видны зрелые споры в спорангиях и остатки клеток (рис.1). Достаточно сходная картина наблюдается и в опыте по культивированию штамма с другими вариантами питательных сред, которые содержали сульфат аммония и глутамат натрия. В этих условиях бактерицидное вещество на заметном уровне (100 АЕ/мл) появляется лишь после 18 ч роста, продолжая накапливаться в КЖ вплоть до 3 сут инкубации.
Таблица 1
Антимикробные активности бесклеточных ферментатов и образцов бактериоциноподобного вещества из супернатантов и поверхности клеток в зависимости от источника азота в среде роста В. circulans Ск2ч Listeria monocytogenes
|
Источник азота в среде роста |
Ферментаты (АЕ/мл) |
БПВ из супернатанта (АЕ/мл) |
БПВ из КМ (АЕ/мл) |
||||
|
E. coli |
L. monocytogenes |
E. coli |
L. monocytogenes |
E. coli |
L. monocytogenes |
||
|
Аммония оксалат |
Следы |
НО |
50-100 |
НО |
50 |
НО |
|
|
Аммония сульфат |
100- 200 |
10-20 |
1 600-3 200 |
100-200 |
800-1 600 |
3 200 - 6 400 |
|
|
Аммония тартрат |
100- 200 |
100 |
1 600-3 200 |
100-400 |
1 600 - 3 200 |
1 600 - 6 400 |
|
|
Аммония хлорид |
50 |
НО |
200-400 |
50 |
100 |
200 |
|
|
Аммония цитрат |
НО |
НО |
НО |
НО |
НО |
НО |
|
|
Казеина гидролизат |
НО |
НО |
НО |
НО |
НО |
НО |
|
|
Мочевина |
100 |
10 |
800-1 600 |
400-800 |
1 600 |
6 400 |
|
|
Натрия глутамат |
100- 200 |
10 |
400-1 600 |
400-800 |
1 600 |
6 400 |
|
|
Пептон мясной |
НО |
НО |
НО |
НО |
НО |
НО |
|
|
Рыбной муки гидролизат |
НО |
НО |
НО |
НО |
НО |
НО |
|
|
Тиомочевина |
50-100 |
НО |
800 |
200-400 |
800-1 600 |
3 200 |
|
|
ГРМ-бульон (контроль) |
НО |
НО |
НО |
НО |
НО |
НО |
Примечание. НО - активность не обнаруживается.
Таблица 2
Сравнение антимикробной активности супернатантов в зависимости от типа источника углерода в среде культивирования В. circulans Ск2ч
|
Источник углерода |
Активность (АЕ/мл) к |
Источник углерода |
Активность (АЕ/мл) к |
|||
|
E. coli |
L. monocytogenes |
E. coli |
L. monocytogenes |
|||
|
Глюкоза |
100-200 |
50-100 |
Альгинат* |
100-200 |
10 |
|
|
Манноза |
100-200 |
50-100 |
Декстрин |
100-200 |
100-200 |
|
|
Фруктоза |
100-200 |
50-100 |
Декстран |
100 |
10 |
|
|
Лактоза |
100-200 |
50-100 |
Крахмал |
100 |
10 |
|
|
Мальтоза |
100-200 |
10-50 |
Целлюлоза МКЦ** |
200-400 |
10-50 |
|
|
Сахароза |
100-200 |
50-100 |
Целлюлоза ТСХ*** |
100-200 |
10-50 |
|
|
Салицин |
НО |
НО |
Целлюлоза, гидроксиэтил. эфир |
100-200 |
10 |
|
|
Пропандиол |
100 |
НО |
Целлюлоза, метиловый эфир |
200-400 |
10-100 |
|
|
Глицерин |
100-200 |
10 |
ПВП-10**** |
100 |
10 |
|
|
Фиколл Sigma |
100 |
НО |
Лигнин***** |
50-100 |
10 |
|
|
Пектин Himedia |
50-100 |
НО |
Хитозан щелочной |
НО |
НО |
* Альгиновая кислота (Serva), нейтрализованная 10% -ным NaOH до значения рН 7,2; ** микрокристаллическая, фармакопейная; *** для тонкослойной хроматографии; **** поливинилпирролидон м. м.10 000 (Sigma); ***** в составе препарата "Полифепана" на основе лигнина - сорбента медицинского и ветеринарного назначения.
Рис.1. Микроскопическая картина проб КЖ в процессе глубинного культивирования В. circulans Ск2ч в среде на основе тартрата аммония и глюкозы. Мазки окрашены по Граму, просмотрены при увеличении Ч1250 в микроскопе модели Eclipse E200 ("Nikon", China) под иммерсией и оцифрованы с помощью приставки Mini See 1,0 ("Media Info V.0.7.36 Beta", CЄ
Результаты дальнейших исследований по выделению и количественной оценке бактерицидного вещества в некоторых вариантах питательных сред приведены в табл.3. Как следует из представленных данных, все использованные нами полисахариды, кроме лигнина, способствовали продукции БПВ и даже, на первый взгляд, в большей степени, чем в контрольной среде с глюкозой. Анализ результатов этих опытов наводит на мысль о возможной солюбилизирующей роли целлюлоз и альгината, так как их использование приводило к более высокому выходу бактерицидного вещества из супернатанта по сравнению с контролем. Об этом свидетельствует и характер распределения активности БПВ между клеточной массой КЖ и интерфазной пленкой, получаемой из бесклеточного супернатанта (табл.4). Так, если в среде с глюкозой доля сорбированного на клетках бактерицидного вещества составляла 29%, то в средах с добавлением целлюлоз и альгиновой кислоты - от 1,5 до 13,5%. Полученные данные интересны тем, что демонстрируют пути увеличения выхода целевого продукта в жидкую фазу с использованием доступных материалов.
Как показали результаты электрофореза (рис.2) и тонкослойной хроматографии образцов, расположение полос пептидов с активностью против тестштамма E. coli в контроле (рост на глюкозе) и в опыте при выращивании на различных типах целлюлозы практически одинаковое, что свидетельствует об их молекулярной идентичности. По данным биотестирования в опытах по ТСХ показатель Rf для всех образцов супернатанта был равен 0,7. Пептидные полосы БПВ из образцов супернатантов соответствовали молекулярной массе около 5,0-5,7 кДа (рис.2). В то же время у контрольного образца, выделенного из клеточной поверхности продуцента, молекулярный вес активной фракции был несколько выше - около 6,0 кДа (образец 2, рис.2).
Таблица 3
Количественные показатели выхода бактериоциноподобного вещества B. circulans Ск2ч, выделенного методом двухфазного разделения после культивирования продуцента с полисахаридами
|
Источник углерода в питательной среде |
Показатели бактериоцинсодержащей интерфазной пленки |
|||||||
|
Масса, мг |
АА* (АЕ/ мг), к |
Суммарная АА (АЕ/мг), к |
Сравнение с контролем |
|||||
|
Е. сoli |
L. mo- nocytogenes |
Е. сoli |
L. monocytogenes |
Е. сoli |
L. mo- nocytogenes |
|||
|
Альгиновая кислота |
30 |
426 |
27 |
12 780 |
810 |
>3,2 |
>3,75 |
|
|
Глюкоза (контроль) |
54 |
74 |
4 |
3 996 |
216 |
1,0 |
1,0 |
|
|
Лигнин |
8 |
80 |
10 |
640 |
80 |
<6,24 |
<2,7 |
|
|
Метилцеллюлоза |
140 |
69 |
2 |
9 660 |
280 |
>2,4 |
>1,3 |
|
|
Целлюлоза для ТСХ |
16 |
320 |
40 |
5 120 |
640 |
>1,28 |
>2,96 |
|
|
Целлюлоза микрокристаллическая |
26 |
492 |
31 |
12 792 |
806 |
>3,2 |
>3,73 |
* Антимикробная активность.
Таблица 4
Распределение антимикробной активности бактериоциноподобного вещества B. circulans Ск2ч между жидкой фазой и клетками в зависимости от углеводного состава ферментата
|
Источник углерода в среде роста |
АА против Е. сoli (АЕ/мг) образцов БПВ из |
Сорбировано на поверхности клеток, % |
|||
|
ИП |
КМ |
ИП + КМ |
|||
|
Альгиновая кислота |
12 780 |
799 |
13 579 |
5,8 |
|
|
Метилцеллюлоза |
9 660 |
789 |
10 449 |
7,5 |
|
|
Микрокристаллическая целлюлоза |
12 792 |
200 |
12 992 |
1,5 |
|
|
Целлюлоза для ТСХ |
5 120 |
800 |
5 920 |
13,5 |
|
|
Глюкоза (контроль) |
3 996 |
1 632 |
5 628 |
29,0 |
Рис.2. Тестирование образцов бактерицидного вещества по данным ДСН-ПААГ электрофореза и определения величины молекулярного веса антимикробной фракции, действующего на штаммы E. coli: 1 - маркеры (5,7 и 14,5 кДа); 2 - контрольный образец (среда с глюкозой), выделенный из клеточной массы; 3 - то же из супернатанта; 4 - опытный образец из супернатанта, полученный при культивировании в присутствии метилцеллюлозы, 5 - то же с микрокристаллической целлюлозой
Сопоставление результатов ТСХ бактерицидных веществ, полученных из клеточной массы и супернатанта, также указывает на их отличие. На полосках силикагеля после окраски нингидрином выявлялись пятна с Rf 0,5 для образца из клеточной массы и Rf 0,7 - из супернатанта. В результате биотестирования разрезанных полосок силикагеля (фрагменты по 0,5 см) после ТСХ было установлено, что образцы из клеточной массы оказывались активными против L. monocytogenes, а образцы из супернатанта - преимущественно против Е. сoli. Эти данные дают основание предполагать о синтезе B. circulans Ск2ч двух пептидных компонентов с несколько различной антимикробной активностью.
В результате сравнительных испытаний по выбору способа выделения бактерициноподобного вещества из бесклеточных супернатантов B. circulans установлено, что более предпочтительным оказался метод преципитации целевой фракции с помощью неполярных растворителей (табл.5). Теоретической предпосылкой целесообразности выбора указанного способа явилось то, что бактериоцины по своей природе имеют аффинность к гидрофобным растворителям, что предполагает возможность их сбора на границе раздела фаз (вода/растворитель). Дихлорметан обладает низкой температурой кипения (40єС), меньшим уровнем токсичности по сравнению с хлороформом, толуолом, легко удаляется из растворов и, благодаря этому, имеется возможность для многократного его использования. Кроме того, обработка супернатанта ДХМ позволяет выделить до 94,6% целевой субстанции с одновременным снижением в ней (на 86% по массе) количества балластных веществ (табл.6).
Таблица 5
Выходы образцов бактериоциноподобного вещества в зависимости от способа обработки супернатанта
|
Способ и средство выделения |
Выход, АЕ*/100 мл |
Потери, АЕ/100 мл |
||
|
Высаливание |
Сульфат аммония |
48 000 ± 17 000 |
Около 52 000 |
|
|
Сорбция на твердых носителях |
Уголь активированный |
54 000 ± 8 000 |
Около 46 000 |
|
|
Силикагель 100/250 |
72 000 ± 12 000 |
Около 28 000 |
||
|
Окись алюминия |
16 000 ± 4 000 |
Около 84 000 |
||
|
Аэросил А-300 |
43 000 ± 9 000 |
Около 57 000 |
||
|
Разделение в двухфазной системе |
Хлороформ |
93 000 ± 15 000 |
Около 7 000 |
|
|
Дихлорметан |
95 000 ± 11 000 |
Около 5 000 |
||
|
Толуол |
75 000 ± 6 000 |
Около 3 600 |
* АЕ - арбитражная единица активности в отношении Е. сoli.
Таблица 6
Количественные показатели фракционирования супернатанта B. circulans Ск2ч с использованием дихлорметана
|
Образцы |
Содержание сухих веществ |
Активность против E. coli, АЕ |
||||
|
мг |
% |
АЕ/мг |
Суммарная |
% АЕ |
||
|
Супернатант |
850 |
100,0 |
30,0 |
3348 |
100,0 |
|
|
Верхняя фаза |
740 |
86,2 |
0,2 |
148 |
4,4 |
|
|
Промежуточная фаза |
108 |
12,7 |
29,6 |
3200 |
94,6 |
|
|
Нижняя фаза |
10 |
1,0 |
1,0 |
10 |
1,0 |
Таким образом, способность штамма B. circulans Ск2ч производить бактерицидное вещество на простых по составу средах при обычных условиях аэробного роста с возможностью его извлечения малозатратными методами делает этот штамм технологически перспективным в качестве продуцента нового антибактериального средства. В результате выполненных исследований были определены условия для получения и более глубокого изучения его свойств и химической структуры.