В возрастной динамике синантропных мышей установлено, что все молодые мышевидные грызуны были менее инвазированы, чем более старые особи. С возрастом происходит усиление интенсивности инвазии мышей в лесных массивах Белгородской области. С момента выхода из нор молодые особи мышевидных грызунов поражаются клещами, контактируя с растительностью.
Следует отметить, что исследования, проведенные в лесных массивах Белгородской области, позволяют охарактеризовать роль мышевидных грызунов как хозяев преимагинальных стадий развития иксодовых клещей и отметь отдельные особенности их инвазирован- ности. Как хозяева преимагинальных стадий Ixodes acinus особенно преобладают виды мышей Sylvaemus sylvaticus и Sylvimus flavicollis, несколько меньший вклад от обычной полевки Apodemus agrarius.
Численность популяции мышевидных грызунов в лесных массивах Белгородской области достигает максимума в конце лета или начале осени. Этот пик коррелирует с пиком плотности преимагинальных стадий клещей Ixodes ricinus, что и показано в наших исследованиях, а также коррелирует с исследованиями других ученых в России и Европе. Наименьшее количество мышевидных грызунов наблюдалось нами ранней весной. В этот период среди иксодовых клещей выявлена наибольшая численность взрослых стадий развития, не требующих промежуточных хозяев--грызунов, поскольку, как правило, в этих стадиях клещи паразитируют на больших млекопитающих (виды, которые не имеют таких ежегодных колебаний численности популяции).
Таким образом, происходит синхронизация развития клещей Ixodes ricinus и численности популяции мышевидных грызунов, благодаря чему они являются их важными хозяевами.
Наши исследования совпадают с данными других авторов, удостоверяющих связь клещей Ixodes ricinus с численностью и активностью мышевидных грызунов [10, 12, 16].
Таким образом, нами подтверждена гипотеза о том, что небольшие или многочисленные группы мышевидных грызунов в лесных массивах вблизи животноводческих ферм и комплексов могут обеспечить условия паразитирования определенным локальным популяциям иксодовых клещей в окружающей синантропной среде.
Заключение
Экстенсивность инвазии мышевидных грызунов, обнаруженных в лесных массивах вблизи сельскохозяйственных комплексов и ферм Белгородской области, была наибольшей на мышах вида Sylvaemus sylvaticus, что на 13,26 % больше (Р < 0,05) зараженности вида Sylvimus flavicollis и на 24,33 % больше (Р < 0,01) экстенсивности инвазии по виду мышей Apodemus agrarius. Интенсивность инвазии по преимагинальным (личинкам и нифам) стадиям клещей Ixodes ricinus имела широкие колебания в зависимости от вида синантропного грызуна. Так, наибольшим данный показатель был отмечен нами по виду мышей Sylvaemus sylvaticus, что на 8,73 больше (Р < 0,001), чем у вида Sylvimus flavicollis и на 13,56 выше, чем у вида мышей Apodemus agrarius. Максимальная зараженность самцов синантропных видов мышей составила 31 особь по виду Sylvaemus sylvaticus, 19 особей клещей по виду Sylvimus flavicollis и 9 паразитов по виду Apodemus agrarius. Интенсивность инвазии синантропных мышей была самой высокой в летние месяцы (с июля по август) и несколько снижалась осенью. Осенью 41,2 % исследованных грызунов были поражены клещами, при этом преобладали личинки Ixodes ricinus. Личинки и нимфы иксодовых клещей вида Ixodes ricinus чаще были прикреплены на грызунах в области головы (преимущественно на ушах) -- 82 %, реже на других частях тела--18 %. Меньшее количество клещей было подкреплено на шее, туловище, лапках, иногда обнаруживали паразитов на хвосте мышей.
Библиографический список
1. Беспятова Л.А., Бугмырин С.В. О распространении Европейского лесного клеща Ixodes Ricinus (Acarina, Ixodidae) в Республике Карелия (Россия) // Зоологический журнал. 2021. Т. 100. № 7. С. 745--755. doi: 10.31857/S 0044513421070035
2. Шутова О.В., Михеев В.А. Мышевидные грызуны окрестностей города Димитровград: видовой состав, динамика численности, зараженность // Наука Online. 2018. № 2 (3). С. 14--26.
3. Изварин Е.П., Зыков С.В., Фоминых М.А. Желтогорлая мышь (Sylvaemus Flavicollis, Muridae)-- новый вид в фауне млекопитающих Cвердловской области // Зоологический журнал. 2013. Т. 92. № 3. С. 371--376. doi: 10.7868/S 0044513413010066
4. Abdad M.Y., Abou Abdallah R., Fournier P.E., Stenos J., Vasoo S. A concise review of the epidemiology and diagnostics of Rickettsioses: Rickettsia and Orientia spp. // Journal of dinical Microbiology. 2018. № 56 (8). Р. e01728--17. doi: 10.1128/JCM.01728-17
5. Ерофеева В.В., Масленникова О.В. Обыкновенная полевка (Microtus Arvalis) и ее роль в поддержании зоонозов на урбанизированных территориях в Вятско-Камском междуречье // Научно-методический электронный журнал Концепт. 2013. № 3. С. 2306--2310.
6. Adaszek L., Martinez A.C., Winiarczyk S. The factors affecting the distribution of babesiosis in dogs in Poland // Veterinary parasitology. 2011. № 181 (2--4). Р. 160--165. doi: 10.1016/j.vetpar.2011.03.059
7. Jacob S.S., Sengupta P.P., Paramanandham K., Suresh K.P., Chamuah J.K., Rudramurthy G.R., Roy P. Bovine babesiosis: An insight into the global perspective on the disease distribution by systematic review and metaanalysis // Veterinary parasitology. 2020. № 283. Р. 109136. doi: 10.1016/j.vetpar.2020.109136
8. Grigoryeva L.A., Stanyukovich M.K. Differential diagnosis of Ixodes Ricinus and Ixodes Persulcatus: nymphs and larvae // Experimental and Applied Acarology. 2018. № 75. Р. 97--106. doi: 10.1007/s10493-018-0244-0
9. Mierzejewska E.J., Dwuznik D., Koczwarska J., Stanczak L., Opalinska P., Krokowska-Paluszak M., Wierzbicka A., Gorecki G., Bajer A. The red fox (Vulpes vulpes), a possible reservoir of Babesia vulpes, B. canis and Hepatozoon canis and its association with the tick Dermacentor reticulatus occurrence // Ticks and Tick-borne Diseases 2020. Vol. 12. № 1. Р. 101551. doi: 10.1016/j.ttbdis.2020.101551
10. Kovalev S.Y., Mukhacheva T.A. AN Improved real-time PCR method to identify hybrids between Ixodes Persulcatus and Ixodes Ricinus ticks // Ticks and Tick-borne Diseases. 2018. Vol. 9. № 1. Р. 37--38. doi: 10.1016/j.ttbdis.2017.10.011
11. Mateos-Hernandez L., Defaye B., Simo L., Vancova M., Hajdusek O., Sima R., Park Y., Attoui H. Cholinergic axons regulate type I acini in salivary glands of Ixodes Ricinus and Ixodes Scapularis ticks // Scientific Reports. 2020. № 10 (1). Р. 16054. doi: 10.1038/s41598-020-73077-1
12. Корзиков В.А., Васильева О.Л., Коралло-Винарская Н.П., Медведев С.Г. Гамазовые клещи (Gamasina), связанные с мелкими наземными позвоночными на юге Нечерноземного Центра России (Калужская область) // Паразитология. 2021. Т. 55. № 2. С. 101--124. doi: 10.31857/S 0031184721020034
13. Газзаві-Рогозіна Л.В., Ткачов О.В., Ткачова О.Л., Бурлака І.С. Метод визначення зараженості продуктів запасу комахами та кліщами. Патент на корисну модель UKR UA 134094, 25.04.2019. Заявка № u201812971 от 27.12.2018.
14. Газзаві-Рогозіна Л.В., Ткачов О.В., Дьоміна Є.В., Набока О.І., Філіпцова О.В., Бурлака І.С. Метод епізоотичної оцінки місцевості щодо іксодових кліщів. Патент на корисну модель UKR UA 119639, 25.09.2017. Заявка № u201705111 от 25.05.2017.
15. Газзаві-Рогозіна Л.В., Ткачов О.В., Дьоміна Є.В., Ткачова О.Л. Спосіб епізоотичної оцінки місцевості щодо окрилених комарів. Патент № UA 119493 C 2. № a 2017 0794: заявл. 31.07.2017.
16. Сироткин М.Б., Коренберг Э.И. Термальные константы развития клещей Ixodes Persulcatus и Ixodes Ricinus, определяющие продолжительность их жизненного цикла и распространение // Зоологический журнал. 2022. Т. 101. № 3. С. 256--261. doi: 10.31857/S 0044513422030126
References
1. Bespyatova LA, Bugmyrin ST. On the distribution of the castor bean tick, Ixodes ricinus (Acarina, Ixodidae), in the republic of Karelia, Russia. Zoologicheskiy zhurnal. 2021;100(7):745--755. (In Russ.). doi: 10.31857/ S0044513421070035
2. Shutova OV, Mikheev VA. Mouse-like rodents in vicinity of Dimitrovgrad: species, population dynamics, infestation. Science Online. 2018;(2):14--26.
3. Izvarin IP, Zykov SV, Fominykh MA. Yellow-necked mouse (Sylvaemus flavicollis, muridae) is a new species in the mammal fauna of the Sverdlovsk region. Zoologicheskiy zhurnal. 2013;92(3):371--376. (In Russ.). doi: 10.7868/S 0044513413010066
4. Abdad MY, Abou Abdallah R, Fournier PE, Stenos J, Vasoo S. A concise review of the epidemiology and diagnostics of Rickettsioses: Rickettsia and Orientia spp. Journal of Clinical Microbiology. 2018;56(8): e01728--17. doi: 10.1128/JCM.01728-17.
5. Erofeeva VV, Maslennikova OV. The common vole (Microtus arvalis) and its role in maintaining zoonoses in urbanized territories in the Vyatka-Kama interfluve. Nauchno-metodicheskii elektronnyi zhurnal Kontsept. 2013;3:2306--2310. (In Russ.).
6. Adaszek L, Martinez AC, Winiarczyk S. The factors affecting the distribution of babesiosis in dogs in Poland. Veterinary parasitology. 2011;181(2--4):160--165. doi: 10.1016/j.vetpar.2011.03.059.
7. Jacob SS, Sengupta PP, Paramanandham K, Suresh KP, Chamuah JK, Rudramurthy GR, et al. Bovine babesiosis: An insight into the global perspective on the disease distribution by systematic review and metaanalysis. Veterinary parasitology. 2020;283:109136. doi: 10.1016/j.vetpar.2020.109136
8. Grigoryeva LA, Stanyukovich MK. Differential diagnosis of Ixodes Ricinus and Ixodes Persulcatus: nymphs and larvae. Experimental and Applied Acarology. 2018;75(1):97--106. doi: 10.1007/s10493-018-0244-0
9. Mierzejewska EJ, Dwuznik D, Koczwarska J, Stanczak L, Opalinska P, Krokowska-Paluszak M, et al. The red fox (Vulpes vulpes), a possible reservoir of Babesia vulpes, B. canis and Hepatozoon canis and its association with the tick Dermacentor reticulatus occurrence. Ticks and Tick-borne Diseases. 2020;12(1):101551. doi: 10.1016/j.ttbdis.2020.101551
10. Kovalev SY, Mukhacheva TA. An Improved real-time PCR method to identify hybrids between Ixodes Persulcatus and Ixodes Ricinus ticks. Ticks and Tick-borne Diseases. 2018;9(1):37--38. doi: 10.1016/j. ttbdis.2017.10.011
11. Mateos-Hernandez L, Defaye B, Simo L, Vancova M, Hajdusek O, Sima R, Park Y, Attoui H. Cholinergic axons regulate type I acini in salivary glands of Ixodes ricinus and Ixodes scapularis ticks. Scientific Reports. 2020;10(1):16054. doi: 10.1038/s41598-020-73077-1
12. Kozikov VA, Vasilyeva OL, Korallo-Vinarskaya NP, Medvedev SG. Gamasid mites associated with small terrestrial vertebrates in the south of central Non-Black Earth region of Russia (Kaluga region). Parazitologiya. 2021;55(2):101--124. (In Russ.). doi: 10.31857/S 0031184721020034
13. Gazzavi-Rogozina LV, Tkachev AV, Tkacheva OL, Burlaka IS. Metod opredeleniya zarazhennosti produktov zapasa nasekomymi i kleshchami [Method of determining contamination of food stock with mosquitoes and ticks]. Patent UKR UA, no. 134094, 2019. (In Ukr.).
14. Gazzavi-Rogozin LV, Tkachev AV, Dyomina KV, Naboika OT, Filiptsova OV, Burlaka VS. Metod epizooticheskoi otsenki mestnosti po iksodovym kleshcham [Method for epizootic terrain assessment by Ixodes ticks]. Patent UKR UA, 119639, 2017. (In Ukr.).
15. Gazzavi-Rogozin LV, Tkachev AV, Dyomina KV, Tkacheva OL. Sposob epizooticheskoi otsenki mestnosti po okrylennym komaram [Method for epizootic terrain assessment by winged mosquitoes]. Patent UKR UA, 119493 C 2, 2017. (In Ukr.).
16. Sirotkin MB, Korenberg EI. Thermal constants of the development of Ixodes persulcatus and Ixodes ricinus ticks, which determine the duration of their life cycle and their distributions. Zoologicheskiy zhurnal. 2022;101(3):256--261. (In Russ.). doi: 10.31857/S 0044513422030126