* Статистическая значимость достоверности различий клеток крови в опытной группе животных по сравнению с данными в контрольной группе при р < 0,05.
Примечание. D - диаметр; Н - высота; V - объем; 5 - площадь поверхности.
Не исключено, что изменения в морфологии нейтрофилов связаны с особенностями их локомоторной функции. По данным литературы при развитии опухолей в организме происходит изменение хемотаксической активности нейтрофилов, обусловленное продукцией низкомолекулярных факторов опухолевого перерождения, которые воздействуют на рецепторный аппарат клетки [3].
В рельефе поверхности лимфоцитов характерных особенностей при развитии опухолей не выявлено. Лимфоцитам было свойственно увеличение диаметра клеток 11,7 % (р < 0,05) на фоне снижения их высоты на 12,8 % (р < 0,05), при этом площадь поверхности возросла на 43,6 % (р < 0,05) по сравнению с контролем. В группе опытных животных установлена ярко выраженная реакция распластывания лимфоцитов, что вероятно связано с дефектами в структуре цитоскелета [4].
Диапазон значений упругости клеток крови при развитии опухолевого процесса существенно расширялся от 10 до 30 Па, в то время как в контроле он находился в пределах 12-17 Па. Функционально активной была поверхность лимфоцитов и нейтрофилов. По данным АСС установлено снижение упругости лимфоцитов во всех точках наноидентирования в группе опытных животных. Снижение упругости в лимфоцитах по краю клетки на 42,7 % (р < 0,05) в группе крыс из экспериментальной группы свидетельствует о его лидерстве в механизмах направленной миграции к очагам иммунных реакций.
Модуль упругости поверхности нейтрофилов крыс опытной группы увеличился по краю клетки в области гликокаликса на 107,4 % (р < 0,05), а также в области сегмента ядра, что указывает на повышение их способности адгезировать к сосудистой стенке. По данным литературы нейтрофилы первыми (на 10-е сутки после инокуляции опухолевых клеток) мигрируют к опухоли на ранних стадиях ее формирования [10], инфильтруют очаги опухолевого роста и становятся активными компонентами стромы [9].
Упругость поверхности эритроцитов опытной группы животных увеличилась во всех точках наноидентирования. По периферии эритроцита упругость возросла на 53,3 % (р < 0,05), а в области центрального углубления - на 59,2 % (р < 0,05) по сравнению с контролем, что может быть связано с их активным участием в транспортных процессах и переносом на своей поверхности иммунных комплексов. Кроме того, одной из причин увеличения упругости мембран клеток крови, при злокачественном росте может быть изменение состава сфинголипидов, существенно влияющих на структуру липидного бислоя мембран. Уменьшение м олярного соотношения церамиды/ганглиозиды показано при опухолях яичников [7].
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
кровь клетка яичник микроскопия
Таким образом, функционально ведущими популяциями, отражающими развитие неопластических процессов в организме, являются лимфоциты и нейтрофилы. Упругость клеточной поверхности является диагностическим признаком ранних изменений в организме при развитии опухоли.
Расширение диапазона упругости поверхности клеток крови является маркером ранних изменений в организме сопровождающих развитие опухолевого перерождения тканей. Изменение геометрических параметров и «рисунка» рельефа поверхности клеток крови не является надежным диагностическим критерием, отражающим развитие опухолевого процесса в организме.
ЛИТЕРАТУРА
1. Берштейн Л.М. Гормональный канцерогенез // Природа. - 2000. - № 3. - С. 22-27.
2. Берштейн Л.М., Порошина Т.Е., Цырлина Е.В. Способ определения ДНК-повреждающей способности эстрогенов. Патент 2223503 (13) C2, МПК G01N33/74. № 2001101708/15; заявл. 17.01.2001.
3. Мальцева В.Н, Сафронова В.Г. Неоднозначность роли нейтрофила в генезе опухоли // Цитология. - 2009. - Т. 51, № 6. - С. 467-474.
4. Ровенский Ю.А., Васильев Ю.М. Морфогенетические реакции клеток и их нарушения при опухолевой трансформации // Канцерогенез. - 2004. - С. 376-414.
5. Скоркина М.Ю., Федорова М.З., Сладкова Е.А. Нанотехнологические подходы в изучении механических свойств клеточных поверхностей при стимуляции и блокаде адренорецепторов // Клеточные технологии в биологии и медицине. - 2010. - № 3. - С. 153-155.
6. Скоркина М.Ю., Чернявских С.Д., Федорова М.З. Влажная камера для исследования нативных клеток крови. Патент 98248 Российская федерация, МПК G01N 33/48 (2006.01). № 2010105541; заявл. 16.02.2010.
7. Brustmann H., Riss, Naude P.S. The relevance of angiogenesis in benaingn and malignant epithelial tumors of the ovary a quantitative histologic study // Gynec Oncol. - 1997. - Vol. 67. - P. 20-26.
8. Folkman J. Is Tissue Mass Regulated by Vascular Endothelial Cells? Prostate as the First Evidence // Endocrinology. - 1998. - Vol. 139, № 2. - P. 441.
9. Lightfoot A., Martin J., Amendola A. Fluorescent viability stains overestimate chondrocyte viability in osteoar- ticular allografts // The American Journal of Sports Medicine. - 2007. - Vol. 35, № 11. - P. 1817-1823.
10. Mueller M.M., Fusenig N.F. Friends or foes - bipolar effects of the tumor stroma in cancer // Nature Rev. Cancer. - 2004. - Vol. 4. - P. 839-849.
REFERENCES
1. Bershtein L.M. Hormonalnyi kancherogenez [Hormonal carcinogenesis]. Priroda [Nature], 2000, no. 3, pp. 22-27. (In Russ.; abstr. in Engl.).
2. Bershtein L.M., Poroshina T.E. Sposob opredeleniya DNK-povrezhdayushei sposobnosti jestrogenov [The method for determining the DNA-damaging ability of estrogens]. Patent 2223503 (13) C2, MPK G01N33/74. №2001101708/15, zayvl. 17.01.2001.
3. Malcheva V.N., Safonova V.G. Neodnoznachnost roli neitrofila v geneze opuholi [Ambiguity of the role of neutrophil in tumor genesis]. Tsitologiya [Cytology], 2009, Vol. 51, no. 6, pp. 467-474. (In Russ.; abstr. in Engl.).
4. Rovenskii Yu.A, Vasiliev Yu.M. Morfogeneticheskie reakchii kletok krovi i ih narusheniya pri opuholevoi transformachii [Morphogenetic reactions of cells and their disturbances in case of tumor transformation]. Kancerogenez [Carcinogenesis], 2004, pp. 376-414. (In Russ.; ab- str. in Engl.).
5. Skorkina M.Yu., Fedorova M.Z., Sladkova E.A. Nanotehnologicheskie podhody v izuchenii mehanicheskih svoistv kletochnyh poverhnostei pri stimuliycii I blockade adrenoreceptorov [Nanotechnological approaches in the study of the mechanical properties of cellular surfaces with stimulation and blockade of adrenoreceptors]. Kletochnye tekhnologii v biologii i medicine [Cell Technologies in Biology and Medicine], 2010, no. 3, pp. 153-155. (In Russ.; abstr. in Engl.).
6. Skorkina M.Yu., Chernyvskih S.D., Fedorova M.Z. Vlazhnaya kamera dly issledovaniy nativnyh kletok krovi [Wet chamber for the study of native blood cells]. Patent 98248 RF, MPK G01N 33/48 (2006.01). № 2010105541; zayvl. 16.02.2010.
7. Brustmann H., Riss, Naude P.S. The relevance of angiogenesis in benaingn and malignant epithelial tumors of the ovary a quantitative histologic study. Gynec Oncol., 1997, Vol. 67, pp. 20-26.
8. Folkman J. Is Tissue Mass Regulated by Vascular Endothelial Cells? Prostate as the First Evidence. Endocrinology, 1998, Vol. 139, no. 2, pp. 441-442.
9. Lightfoot A., Martin J., Amendola A. Fluorescent viability stains overestimate chondrocyte viability in osteoarticular allografts. The American Journal of Sports Medicine, 2007, Vol. 35, no. 11, pp. 1817-1823.
10. Mueller M.M., Fusenig N.F. Friends or foes - bipolar effects of the tumor stroma in cancer. Nature Rev. Cancer, 2004, Vol. 4, pp. 839-849.