Статья: Выращивание картофеля in vitro на безгормональных и гормональных питательных средах разного состава

Внимание! Если размещение файла нарушает Ваши авторские права, то обязательно сообщите нам

Рисунок 2. Коэффициент эффективности влияния гормональных сред по отношению к безгормональным на высоту микрорастений (%), 4 учет

При анализе коэффициента эффективности (рисунок 3) на показатели количество корней, отмечено: высокий коэффициент (52,2%) регистрируется у сорта Барин на среде МС 0,1, низкий коэффициент также отмечен на данной среде (-29,9%) у сорта Северное сияние.

При анализе коэффициента эффективности (рисунок 4) на показатели процесса микроклубнеобразования, выявлено: высокий коэффициент (150%) регистрируется у сорта Гала на средах МС 0,1 и 0,2, низкий коэффициент также на среде МС 0,2 (- 100%) у сорта Северное сияние.

Некоторые данные опыта оказались неоднозначными, однако прослеживается взаимосвязь положительного влияния низких концентраций гормонов в среде на такие показатели как количество листьев, высота микрорастений, ризогинез и процессы микроклубнеобразования.

Рисунок 3. Коэффициент эффективности влияния гормональных сред по отношению к безгормональным на количество корней (%), 4 учет

Рисунок 4. Коэффициент эффективности влияния гормональных сред по отношению к безгормональным на процесс микроклубнеобразования (%), 4 учет

Заключение

Во всех вариантах опыта отмечена сортоспецифичность. Положительная динамика в приросте показателей наблюдается почти во всех вариантах опыта на безгормональных средах Кворина-Лепуавра (QL б/г). На гормональных средах выраженный прирост показателей количества листьев на всех сортах прослеживается на средах МС 0,1 и 0,2, DKW и QL 0,1. Также на всех сортах на среде МС 0,2 фиксируется положительная динамика ризогинеза. При анализе процесса микроклубнеобразования, прирост показателей отмечается на среде 0,1 - МС и 0,2 - QL и DKW, данные прироста на среде МС 0,2 неоднозначны.

гормональный питательный картофель корнеобразование

Список источников

1. Бутенко Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфология растений. М.: Изд-во «Наука», 1964. С. 272.

2. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). 5-е изд., доп. и перераб. М.: Агропромиздат, 1985. С. 351.

3. Лебедева Н.В. Ускоренное размножение ранних сортов картофеля в условиях in vitro и его использование в семеноводстве Северо-Запада РФ. Великие Луки, 2015. С. 188.

4. Методические рекомендации по тиражированию in vitro материала на основе БЗСК для оригинального семеноводства картофеля / Е.В. Овэс [и др.]. Москва, 2017. С. 26.

5. Основные исследования и практическое применение методов биотехнологии в картофелеводстве / Р.В. Папихин, Г.М. Пугачёва, С.А. Муратова, Ю.В. Мазаева, К.Е. Никонов // Наука и Образование, 2021. Т. 4. № 1.

6. Факторы, влияющие на микроклубнеобразование картофеля / Р.В. Папихин, Г.М. Пугачёва, С.А. Муратова, Ю.В. Мазаева, К.Е. Никонов // Наука и образование, 2021. Т. 4. № 1.

7. Способы получения безвирусного картофеля in vitro / Р.В. Папихин, Г.М. Пугачёва, С.А. Муратова, Н.С. Чусова, К.Е. Никонов // Наука и Образование. 2020. Т. 3. № 1. С. 88.

8. Рябцева Т.В., Куликова В.И., Ходаева В.П. Оценка питательных сред при размножении сортов картофеля в культуре in vitro // Международный научно-исследовательский журнал. 2017. № 12 (66). Часть 3. С. 134-137;

9. Ходаева В.П., Куликова В.И. Размножение сортов картофеля в культуре in vitro на различных питательных средах // Земледелие и растениеводство. Достижения науки и техники АПК. 2016. Т. 30. № 10. С. 66-68.

10. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. J. Plant Physiol, 1962, vol. 15, pp. 473-497.

References

1. Butenko R.G. Culture of isolated tissues and physiology and morphology of plants. Moskow Nauka Publishing House, 1964. P. 272.

2. Armor B.A. Methods of field experience (with the basics of statistical processing of research results). 5th ed., add. and reworked. Moscow: Agropromizdat, 1985. P. 351.

3. Lebedeva N.V. Accelerated propagation of early potato varieties in vitro and its use in seed production in the North West of the Russian Federation. Velikie Luki, 2015. P. 188.

4. Oves E.V. et al. Methodological recommedations for in vitro replication of material based on BZSK for original potato seed production. Moscow, 2017. P. 26.

5. Papikhin R.V., G.M. Pugacheva, S.A. Muratova, Yu.V. Mazaeva, K.E. Nikonov. Basic research and practical application of biotechnology methods in potato growing. Science and Education, 2021, vol. 4, no. 1.

6. Papikhin R.V., G.M. Pugacheva, S.A. Muratova, Yu.V. Mazaeva, K.E. Nikonov. Factors affecting potato microtuberization. Science and education, 2021, vol. 4, № 1.

7. Papikhin, R.V., G.M. Pugacheva, S. A. Muratova, N.S. Chusova, K.E. Nikonov. Methods for obtaining virus-free potatoes in vitro. Science and education, 2020, vol. 3, № 1, pp. 88.

8. Ryabtseva T.V., V.I. Kulikova, V.P. Khodaeva. Evaluation of Nutrient Media in Propagation of Potato Varieties in In Vitro Culture. International Research Journal, 2017, № 12 (66), part 3, pp. 134-137.

9. Khodaeva V.P., V.I. Kulikova. Propagation of potato varieties in culture in vitro on various nutrient media. Agriculture and crop production. Achievements of science and technology of the agro-industrial complex, 2016, vol. 30, № 10, pp. 66-68.

10. Murashige T., F. Skoog. A Revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. J. Plant Physiol, 1962, vol. 15, pp. 473-497.