Статья: Об использовании флоридзина при микроразмножении садовых растений

Об использовании флоридзина при микроразмножении садовых растений

М.Т. Упадышев,

Э.М. Дроздовский

Аннотации

Изучали влияние флоридзина на ризогенез микропобегов груши (Pyrus communis L.), рябины (Sorbus aucuparia L.), малины красной (Rubus idaeus L.) ремонтантного типа, ежевики (Rubus sp.), малино-ежевичных гибридов (Rubus sp.) и жимолости съедобной (Lonicera edulis Tursz.).

MICROPROPAGATION OF GARDEN PLANTS IN VITRO UNDER THE INFLUENCE OF GROWTH REGULATOR FLORIDZINE

M.T. Upadyshev, E.M. Drozdovskii

The effect of floridzine on rhyzogenesis of micropropagule of Pyrus communis L., Sorbus aucuparia L., Rubus idaeus L. of remontant type, Rubus sp., and Lonisera edulis Tursz. was studied. It was shown, that employment of floridzin as separately as together with indolyl butyric acid stimulates the forming of roots in micropropagule of fruit and berry crops. Stimulatory action of floridzin depends on special and varietal peculiarities of plants and also on their ability for taking root.

В течение продолжительного времени эндогенные фенольные соединения рассматривали как ингибиторы роста растений, к числу которых был отнесен и флоридзин (1). Однако еще в конце 60-х - начале 70-х годов ХХ века было отмечено, что эти вещества, в том числе и основное фенольное соединение растений яблони - флоридзин, во многих случаях проявляют отчетливую стимуляторную активность (2). Установлено, что продукты окисления и распада флоридзина - флоретин, флороглюцин, флоретиновая кислота также обладают ростстимулирующим эффектом, хотя на некоторые тест-объекты (в частности отрезки колеоптилей пшеницы) могут действовать как ингибиторы (3, 4). К настоящему времени показано, что природные фенольные соединения являются полифункциональными по своему физиологическому действию (5, 6). Обнаружено положительное влияние флоридзина, флоретина, флороглюцина и флоретиновой кислоты на ризогенез растений яблони, малины и ежевики (4, 7-10). Однако в большинстве случаев фенольные соединения оценивали при культивировании in vitro однолетних растений. В экспериментах по совместному воздействию этих веществ и других регуляторов роста был выявлен синергизм ауксинов и фенольных соединений (7).

Целью настоящей работы было исследование раздельного и совместного действия флоридзина и индолилмасляной кислоты на ризогенез различных ягодных и плодовых культур in vitro.

Методика. В опытах использовали побеги груши (Pyrus communis L.) сорта Лада, рябины (Sorbus aucuparia L.) сортов Алая крупная и Титан, малины красной (Rubus idaeus L.) сорта Калашник, ежевики (Rubus sp.) сортов Торнфри и Смутстем, малино-ежевичных (Rubus sp.) гибридов сортов Логанберри, Санберри, Краснодарская, жимолости съедобной (Lonicera edulis Tursz.) сорта МОВИР. флоридзин ризогенез микропобег

Для культивирования пробирочных растений применяли модифицированную среду Мурасиге и Скуга с добавлением сахарозы (15 г/л), тиамина и никотиновой кислоты (по 0,5 мг/л), агар-агара (7 г/л), рН 5,7-5,8. Микропобеги длиной 20-25 мм укореняли на питательной среде с включением индолилмасляной кислоты (ИМК) в концентрации 0,75 мг/л и флоридзина в концентрациях 1, 10 и 100 мг/л. Испытывали три препарата флоридзина: Ф-1 (фирма "Carlo Erbu", Италия), Ф-2 (Всероссийский селекционно-технологический институт садоводства и питомниководства, Москва) (11) и Ф-3 (фирма "Karl Roth", Германия). Культивирование проводили при освещенности 2000 лк, температуре 23-25 оС и 16-часовом фотопериоде. Повторность каждого варианта опыта 15-кратная. Укореняемость (% от общего числа высаженных побегов), число и длину корней, высоту побега, диаметр каллуса у основания экспланта определяли через 2 и 4 нед после высадки микропобегов. Статистическую обработку данных проводили по Доспехову (12).

Результаты. Внесение в питательную среду флоридзина, как отдельно, так и совместно с ИМК у большинства изученных нами культур существенно стимулировало процесс образования корней. При совместном применении ИМК и флоридзина укореняемость трудноукореняемых микропобегов груши возрастала в 2 раза по сравнению с вариантом, в котором использовали только ИМК (рис. а). При этом максимальная укореняемость (40 %) была отмечена при внесении препарата Ф-1 в концентрации 10 мг/л уже через 2 нед культивирования, а Ф-2 - через 4 нед (концентрация 10 и 100 мг/л).

Включение в состав питательной среды для культивирования микропобегов груши флоридзина в концентрации 1 мг/л оказалось малоэффективным. Добавление флоридзина в питательную среду, не содержавшую ИМК, способствовало повышению укореняемости побегов груши на 20 %, стимулировало интенсивный рост корней в длину, что проявлялось через 1 мес культивирования. Однако число корней в вариантах при внесении в среду культивирования только флоридзина было небольшим (табл. 1).

Доля укоренившихся побегов (%) груши сорта Лада (а), рябины сорта Алая крупная (б), ежевики сорта Торнфри (в), малино-ежевичных гибридов сортов Логанберри (г) и Краснодарская (д), жимолости съедобной сорта МОВИР (е) по вариантам опыта: 1 - контроль (без регуляторов роста); 2 - ИМК (0,75 мг/л); 3 - Ф-1 (10 мг/л); 4 - Ф-2 (10 мг/л); 5 - ИМК + Ф-1 (0,75+1 мг/л); 6 - ИМК + Ф-1 (0,75+10 мг/л); 7 - ИМК + Ф-1 (0,75+100 мг/л); 8 - ИМК + Ф-2 (0,75+1 мг/л); 9 - ИМК + Ф-2 (0,75+10 мг/л); 10 - ИМК + Ф-2 (0,75+100 мг/л); ¦ и ? - продолжительность культивирования соответственно 14 и 30 сут.

В случае использования флоридзина в концентрации 100 мг/л в смеси с ИМК наблюдалось сильное разрастание каллусных тканей в основании экспланта: диаметр каллуса был в 1,5 раза больше, чем при использовании ИМК. В литературе имеются сведения об аналогичном влиянии флоридзина на рост каллусной ткани яблони in vitro (13). Однако явного торможения процессов дифференциации корней и роста побегов в длину нами не отмечено.

При увеличении концентрации флоридзина питательная среда приобретала светло-зеленоватый оттенок, что, вероятно, обусловлено окислением и разложением флоридзина с образованием родственных ему продуктов и вызвано автоклавированием среды при высоких температурах. Нельзя не учитывать, что продукты окисления флоридзина при культивировании растений in vitro обладают иной, возможно, и более высокой активностью в отношении ризогенеза, чем флоридзин, как это было показано ранее на растениях яблони в питомнике (14).

Микропобеги рябины красной характеризовались сортовой специфичностью на введение в состав питательной среды флоридзина. Так, укореняемость побегов сорта Алая крупная составляла 50 % уже через 2 нед при добавлении в среду препарата Ф-2 в концентрации 10 мг/л, тогда как в контроле число укоренившихся побегов было в 2,5 раза ниже (рис. б). При совместном применении ИМК и Ф-1 по мере увеличения концентрации последнего на начальном этапе культивирования наблюдалось ингибирование ризогенеза. Однако через 1 мес максимальное укоренение (90 %) отмечено при концентрации Ф-1 100 мг/л. Совместное применение Ф-2 (100 мг/л) и ИМК через 1 мес культивирования также обеспечивало высокую укореняемость. Наибольшее число корней формировалось при введении в среду ИМК и Ф-2 (1 мг/л) через 2 нед культивирования, без регуляторов роста - через 4 нед (см. табл. 1). Интенсивному росту корней в длину способствовало культивирование микропобегов в течение 1 мес на среде с препаратом Ф-2, который превосходил ИМК по эффективности почти в 5 раз (табл. 2).

1. Число корней микропобегов различных плодовых и ягодных культур в зависимости от концентрации флоридзина (Ф) и индолилмасляной кислоты (ИМК) в среде культивирования (шт/раст.)

2. Длина корней микропобегов различных плодовых и ягодных культур в зависимости от концентрации флоридзина (Ф) и индолилмасляной кислоты (ИМК) в среде культивирования (мм)

У рябины сорта Титан в отличие от сорта Алая крупная в течение всего периода укоренения положительный результат выявлен при использовании смеси ИМК и Ф-2 (1 мг/л). При увеличении концентрации последнего наблюдалась тенденция к ослаблению ризогенной активности. Наибольшая длина корней отмечена при внесении в среду культивирования препарата Ф-2 в концентрации 10 мг/л.

Введение в питательную среду флоридзина способствовало значительному усилению ризогенеза побегов ежевики на начальном этапе культивирования. Так, укореняемость побегов сорта Торнфри через 2 нед после посадки составляла 80 % при использовании препарата Ф-2, что в 2 и 4 раза больше, чем в вариантах соответственно без регуляторов роста и при добавлении ИМК (рис. в). Укореняемость побегов ежевики сорта Смутстем на среде с Ф-3 в течение 2 нед достигала 93 %, тогда как в контроле - 53 %, причем длина корней увеличивалась в 1,7-3,0 раза. Этот факт имеет важное практическое значение, так как появляется возможность высадки пробирочных растений в нестерильные условия всего через 2 нед культивирования (на среде укоренения) против 4-6 нед по общепринятой технологии.

На начальных этапах культивирования ИМК ингибировала корнеобразование побегов ежевики, а затем способствовала их максимальной укореняемости (100 %). Добавление флоридзина в питательную среду, содержавшую ИМК, в первые 14 сут культивирования в большинстве случаев снимало или ослабляло ингибирующее действие кислоты на ризогенез. На побегах ремонтантной малины сорта Калашник высокий эффект, сравнимый с таковым при действии ИМК, был достигнут при использовании препарата Ф-3; Ф-2 оказался менее эффективным. Следовательно, при выборе того или иного препарата необходимо учитывать биологические особенности каждой культуры. Малино-ежевичные гибриды также характеризовались специфической реакцией на воздействие различных регуляторов роста. Так, отмечена положительная реакция побегов гибрида Логанберри на введение в питательную среду флоридзина (независимо от препарата) в течение всего периода укоренения (рис. г). Как и в случае с побегами ежевики, на начальном этапе укоренения при использовании флоридзина в смеси с ИМК ингибирующий эффект последней снижался, чего не наблюдалось у побегов гибрида Санберри, высота которых уменьшалась в 1,5-1,7 раза. Для укоренения побегов этих гибридов оптимальной оказалась среда без регуляторов роста или с одним флоридзином, причем наибольшая высота растений (20,4 против 17,7 мм в контроле) отмечена при использовании препарата Ф-2 в концентрации 10 мг/л.